Técnicas Coprológicas En Medicina Veterinaria
Enviado por Juan Burgos • 11 de Diciembre de 2021 • Resúmenes • 1.709 Palabras (7 Páginas) • 53 Visitas
TÉCNICAS COPROLÓGICAS EN MEDICINA VETERINARIA
ADRIANA MORENO
JEFFER MAURICIO MORA BOTIA
ANGÉLICA YURANI GÓMEZ SÁNCHEZ
JUAN DAVID BURGOS VELASCO
Lic. MARTIN ORLANDO PULIDO MEDELLIN
UNIVERSIDAD PEDAGOGICA Y TECNOLOGICA DE COLOMBIA
PARASITOLOGÍA Y ENFERMEDADES PARASITARIAS VETERINARIAS
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TUNJA - BOYACÁ
2021
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ÏNDICE
EXAMEN DE MATERIA FECAL 3
Extracción de muestras 3
Examen cualitativo de heces 3
Técnica de flotación 4
Extensión directa 5
Técnica de sedimentación 5
Técnicas de filtración 7
Coprocultivos o incubación de heces 7
Examen cuantitativo de heces 8
Técnica de Dennis o de sedimentación 8
Técnica de McMASTER 8
Técnica de Kato Katz 8
Técnica de Baermann 8
BIBLIOGRAFÍA 9
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Examen De Materia Fecal
Las pruebas que se mencionan a continuación tiene relevancia en la detección de
parásitos gastrointestinales o broncopulmonares.
Extracción De Muestras
En animales grandes se debe realizar directamente del recto, utilizando un guante de
palpación e introduciendo la mano dentro del recto del animal se recoge realizando un
pequeño giro con la mano y se retira. La muestra extraída debe ser bien sellada ya sea dentro
del mismo guante o frasco y llevada para su debido análisis en el menor tiempo posible.
Cada muestra que se toma debe estar fichada con un registro que posea la
identificación del animal e información complementaria anotada aparte, como por ejemplo si
el animal está en algún tratamiento, región en la que se tomó la muestra, con qué frecuencia
se está realizando algún tratamiento en el hato, etc.
Examen Cualitativo De Heces
Este tipo de estudios revelan únicamente la presencia de elementos parasitarios y su
ejecución es relativamente rápida. En detección macroscópica pueden observarse en la
materia fecal proglótidos de cestodes, adultos de nematodos (Ascáridos, Estrongílidos) o
larvas de Gasterofílidos en equinos. Este tipo de hallazgos es muy frecuente y la búsqueda
debe ser rutinaria.
El estudio microscópico directo de pequeñas muestras es útil para detectar
protozoarios cuyas formas vegetativas no resisten los métodos de conservación (Giardia,
Tritrichomonas, Ameba), o deben observarse a partir del moco o secreción. Los coccidios
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pueden detectarse por observación de improntas de mucosa o del moco presente en la materia
fecal.
Técnica de flotación
La muestra de materia fecal se disuelve en soluciones de alta densidad. Todas las
técnicas de flotación aprovechan la diferencia de densidad de los parásitos con respecto a los
residuos alimentarios. En general, las técnicas basadas en el principio de flotación se utilizan
para los huevos de cestodos y nematodos y de quistes de algunos protozoos, pero no son
adecuadas para algunos huevos de trematodos y alteran los trofozoítos y/o quistes de algunos
protozoos y ciertas larvas de nematodos dificultando su identificación. Mezclar
aproximadamente una cucharadita de heces con suficiente volumen de agua como para hacer
una suspensión semi sólida. Usar un depresor de lengua y un vaso de papel desechable. Poner
dos capas de gasa simple sobre un segundo vaso de papel, y vaciar sobre ellas la suspensión
fecal. Devolver la gasa con los residuos sólidos al primer vaso de papel y desechar.
Centrifugar durante 3 minutos y decantar el sobrenadante que contiene grasas y pigmentos
disueltos. Añadir una solución concentrada de sacarosa (densidad específica 1,33) a 1 cm
desde la boca del tubo y resuspender el sedimento con una varilla aplicadora. Insertar un
tapón y mezclar invirtiendo el tubo cuatro o más veces. Centrifugar durante 5 minutos. Sin
quitar el tubo de la centrífuga, recuperar la película superficial que contiene los huevos y los
quistes tocándola suavemente con una «uña de cristal» o con un asa de platino. Transferir la
película de superficie al portaobjetos de un microscopio y colocar encima un cubreobjetos.
La viscosidad de la solución del azúcar dificulta la mezcla pero, no obstante, la
solución debe quedar completamente mezclada con el sedimento.
Extensión directa
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La observación de un frotis directo realizado por dilución de una pequeña porción de
heces en una gota de solución salina fisiológica es un método rápido y simple. El uso de la
solución salina fisiológica en vez de agua evita la lisis de los trofozoítos de protozoos muy
lábiles a los cambios osmóticos. Mezclar en un mortero 3-5 g de materia fecal con 50 ml de
solución saturada de NaCl. Filtrar la mezcla con un colador, recogiendo el líquido en el tubo
a través del embudo. Dejar reposar 20 minutos y tomar luego una gota de la superficie
utilizando un asa metálica. Colocar la gota entre porta y cubreobjeto. Observar al
microscopio.
Técnica de sedimentación
Detectan objetos que son demasiado pesados o demasiado delicados para concentrarse
por las técnicas antes descritas. La sedimentación es más sensible que el frotis directo desde
el punto de vista del número de organismos detectados, y la preparación es más fácil de leer
al microscopio porque se elimina gran parte de los residuos fecales. Para la técnica de
Ritchiet en la búsqueda de huevos, quistes u ooquistes en materia fecal con alto contenido en
grasas se utilizan los siguientes materiales: Centrífuga, Solución de formol-sal, mortero,
colador común, tubos de centrífuga, éter sulfúrico, pipeta Pasteur, formol comercial (50 ml),
NaCl (5 gr), agua destilada (1L). Disolver 3 g de materia fecal en solución de formol-sal,
filtrar con el colador, llenar las tres cuartas partes del tubo de centrífuga, agregar 2 cm3 de
éter y agitar enérgicamente, centrifugar a 1500 rpm durante 3 minutos, eliminar el
sobrenadante volcando con un movimiento rápido, homogeneizar el sedimento y tomar una
gota con pipeta Pasteur
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