INFORME DE PRÁCTICA DE LABORATORIO Permeabilidad De Membrana

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO[pic 1][pic 2]

FACULTAD DE CIENCIAS E INGENIERIA EN ALIMENTOS

      INFORME DE PRÁCTICA DE LABORATORIO

DATOS INFORMATIVOS:

Alumno: Barreros Santiago                  

Carrera: Ingeniería Bioquímica

Ciclo Académico: Marzo 2017 – Agosto 2017

Asignatura: Biología General

Nivel: Segundo    Paralelo: B

Docente: Mirari Arancibia

Practica de Laboratorio N°: 2

Fecha de Realización: 08/06/2017

Fecha de Presentación: 15/06/2017

TEMA: Permeabilidad De Membrana

1. OBJETIVO GENERAL:

• Observar el comportamiento de las células frente a soluciones con diferente concentración de soluto y el fenómeno de la permeabilidad en una membrana artificial.

1. OBJETIVOS ESPECIFICOS:

• Comparar los cambios producidos tanto en la célula vegetal como en la animal, aplicando una solución hipotónica.
• Identificar las reacciones que generan  las soluciones isotónica e hipertónica en las células.
• Establecer la o las sustancias que podrán atravesar la membrana del papel celofán.

1. MATERIAL Y MÉTODO

• 1 vaso de precipitado de 500 ml
• 1 microscopio de campo claro
• 1 vidrio de reloj
• 3 pipetas Pasteur
• 5 ml de las soluciones de NaCl 0.15 M (0.9%) 0.075 M, y 0.3 M
• 2 ml de fenolftaleína
• 2 ml de lugol
• 15 ml de solución de almidón con hidróxido de amonio
• Piseta con etanol
• Portaobjetos
• Cubreobjetos
• 1 vaso de precipitado de 2 litros
• Placa de calentamiento
• Varilla de vidrio
• Papel seda
• Lanceta
• Papel celofán dulce
• Etiquetas adheribles
• Hilo
• Elodea
• Algodón
• Regla graduada en cm
• Tijera

MÉTODO

I.- Estudio microscópico

1. Se realizó la iluminación de Köhler utilizando una preparación fija.
2. Con una lanceta estéril se picó la yema de un dedo y se depositó la gota de sangre en un vidrio de reloj perfectamente limpio y etiquetado que contuvo 2 ml de la solución de NaCl 0.15 M (0.9%), dejando reposar un minuto. Con ayuda de una pipeta Pasteur se colocó una gota de esta suspensión celular en un portaobjetos, después se colocó el cubreobjetos y se observó. Enfoque con el objetivo de 10X y paso al objetivo de 40X para hacer las observaciones.
3. Se repitió el mismo procedimiento con la solución de NaCl 0.075 M, y con la de 0.3 M.
4. En un vidrio de reloj que contuvo 2 ml de la solución de cloruro de sodio 0.15 M, se depositó una hoja de elodea, dejándola reposar de 2 a 3 min. Se colocó la hoja en un portaobjetos, se cubrió con el cubreobjetos y se realizó la observación al microscopio a 10X y 40X.
5. Se repitió el paso anterior con las otras dos concentraciones

II.- Estudio macroscópico con una membrana artificial

1. Por sección: En un vaso de precipitado se colocó 2 litros agua de la llave, colocando en él un cuadro de papel celofán de 20 x 20 cm por equipo y se hirvió por 15 minutos se lo saco y dejó enfriar.
2. Se unió todas las orillas del papel celofán y se las coloco en su interior 15 ml de la solución de almidón con hidróxido de amonio y amarrándolas con hilo de tal manera que la bolsa que se forma quede perfectamente cerrada.
3. Se enjuago la bolsa con agua de la llave.
4. Agitando la bolsa dentro del vaso de precipitado de 500 ml que contenía agua de la llave y 5 gotas de fenolftaleína durante5 minutos. Se observó el cambio de color del agua.
5. Se abrió la bolsa y agregando 4 gotas de la solución de lugol, se observó la aparición de color.
6. Agregando 4 gotas de lugol al agua del vaso de precipitado, se comparó con la coloración observada en el punto anterior.

1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

1. Esquematice el comportamiento de las células vegetales y animales frente a las concentraciones de NaCl. 

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1. De acuerdo en las observaciones, llene la siguiente tabla:

        Tabla1.

El medio o solución isotónico es aquél en el cual la concentración de soluto esta en igual equilibrio fuera y dentro de una célula. (De La Cruz, 2007).

En hematología, se dice de las soluciones que tienen la misma concentración de sales que el suero de la sangre son isotónicas. Por tanto, tienen la misma presión osmótica que la sangre y no producen la deformación de los glóbulos rojos. Lo que aplicado a la práctica permite la visualización de estos y la conservación de los mismos por un largo tiempo evitando alteración alguna o hemólisis. (De La Cruz, 2007)

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