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METODOLOGÍA EXPERIMENTAL EN EL ESTUDIO DEL DESARROLLO CRANEOFACIAL


Enviado por   •  25 de Octubre de 2015  •  Informe  •  1.264 Palabras (6 Páginas)  •  173 Visitas

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METODOLOGÍA EXPERIMENTAL EN EL ESTUDIO DEL DESARROLLO CRANEOFACIAL 

Embriología experimental en el estudio del desarrollo del paladar y de los mecanismos productores de la fisura palatina

  1. Histología convencional

Todo parte de un tejido muerto fijado con un determinado Fijador como Formaldehido y Paraformaldehido normalmente al 10%.  

  • Objetivo: analizarla morfología interna de una estructura.
  • Pasos:
  1. Lavado con agua corriente.
  2. Deshidratación (alcoholes)
  3. Aclaramiento. Meterlo en un liquido miscible (SILENO) con parafina pq los alcoholes no son miscibles.
  4. Inclusión en parafina(tb en plástico u otros) , la parafina suele estar líquida a >40ºC. EN función del volumen de la pieza se mantienen un tiempo determinado.
  5. Extraccion de la parafina con  la pieza bloque de la pieza embebida en parafina.
  6. Corte con micrótomo obtenemos secciones.
  7. Desparafinas.
  8. Hidratas son soluciones en agua , no podemos pasar de sileno a la tinción, con determinados tiempos vamos hidratando la fórmula.
  9. Tinción (10micras, no muy finos) .
  10. Deshidratación
  11. Montaje de la muestra en cubreobjetos conservación de la muestra.

  • ¿Qué se ve?
  • Da información morfológica, analizando los tejidos. Pero no se sabe el pq se ha producido una malformación o no.

  1. Inmunohistoquímica

Analizar la presencia y localización de moléculas en un tejido. Las  q están o no están en los tejidos, las q debería estar…

  • ¿En que se basa? En la reacción antígeno-anticuerpo. ( la unión del anticuerpo con el antígeno se lleva a cabo a través de su región variable o cadenas ligeras).
  • Epitopos: no hablamos de antígenos. Ej: quiero saber si el tejido con el q trabajo tiene fibronectina (pq es imp para la adhesión de los tejs ) y quiero saber si tienen disminución de la fibronectina.. Compro el epitopo (fibronectina) y un anticuerpo q se pueda visualizar(lligado a HRP o peroxidasa del rábano picante q con un sustrato adecuado da color).  Vere si hay color. Cuando haga el estudio. Si hay color habrá mas Fibronectina y menos color menos fibronectina.

  • Pasos: tendrás q realizar pasos anteriores con la muestra de ratón aunq depende de  q epítopo hayas usado, necesitaras diferentes medios dnd incluir tu muestra.
  1. Inmunización de conejo con fibronectina de ratón (comercial) IgG de conejo antifibronectina de ratón.
  2. Procesado del tej de ratón (especifico)
  3. Incubación con el anticuerpo 1º (IgG conejo)
  4. Incubación con el anticuerpo 2º (de cabra: anti IgG de conejo), después de lavar tras el 1º.
  5. Incubación con sustrato (DAB) para verlo.
  6. Deshidratación y montaje.

  1. Hibridación in situ

Detección de mRNA para saber si un gen se está expresando. Puedo tener una proteína pero no se si el gen q la produjo se expresó hace 3 horas o se está expresando en este momento.

  • Uso en embriología: importante conocer si una alteración se produce pq falta un gen o si es pq está deteriorado.
  • PASOS: Pones una serie de nucleótidos marcados ( para poder verlos) complementarios al gen  q quieres demostrar con una secuencia determinada ( eso se compra  o se pide). Esto se denomina SONDA. Queremos q una secuencia de nucleótidos (del mRNA del gen q queremos investigar) se acople a nuestra muestra.  Si esta el mRNA  significa q el gen se está expresando en ese momento.

IMPORTANTE Q NO HAYA RNAsas!!!  TECNICA TRABAJAR MUY LIMPIO, MUY EN FRIO Y RÁPIDO.

  1. Cultivos de procesos palatinos

Te permiten cambar las condiciones → trabajas como quieres.

  • Pasos
  1. Poner las ratas reproducción conseguir preñadas
  2. A las 13 semanas sacrificamos. Abrimos cuernos uterinos.
  3. Metemos embriones en placa Petri, no tocar liquidos…
  4. Corte de cabeza. Corte de mand y lengua visión intrabucal de procesos palatinos. Extraccion de procesos palatinos.  Dejamos fragmento de la mand para conocer el genotipo (++/--) del embrión. Cada cabeza va a un pocillo para determinar posteriormente el genotipo.(técnica PCR).
  5. Se ponen los procesos palatinos en una placa de cultivo,. En el centro de la placa hay medio de cultivo, y  una rejilla . Encima de la rejilla ponemos un papel y encima los procesos palatinos.

RATONES NEGATIVOS PARA TGF BETA 3

Genotipo: ++ → silvestre /--→ negativo  o mutante/ +-→heterocigotos.

Día 15 de gestación se observa:

Raza c57

  1. Silvestre: presenta paladar primario y secundario y zona perfecta de fusión.
  2. Mutante:  Presenta fisura palatina completa.

Raza MF1

  1. Mutante: Presenta fisura palatina no completa. Una anterior y una posterior. Deben adherir mejor q los de otra raza.

A medida q el ratón crezca se observará mayor separación de las fisuras palatinas.

¿Como se consiguen ratones mutantes para un gen? ( lo hacen las casas comerciales, nosotros compramos los ratones mutados)

  1. Mutación del gen y amplificación del gen en bacterias. Exon: parte del gen q codifica secuencias del dominio activo de TGF beta3. De esa parte el ARN mensajero codificará la proteína TGF beta 3.

  1. Producción del vector: Insertan en ese exón diferentes genes
  1. Gen de resistencia a neomicina: neor
  2. Gen de la timidina kinasa de un herpes virus.
  1. Pones en contacto los vectores dentro de la cla del ratón, pueden ocurrir dos cosas:
  1. Proceso de recombinación homólogo: tienes un gen y le pones al lado un vector hay una recombinación del gen.  El vector de resistencia a neomicina se integra en el gen del ratón q codifica para TGFBETA3   y se pierde el de resistencia a la timidina-kinasa.  expresión de mRNA anormal proteína anormal no funciona. EL gen se bloquea. CLAS ROSAS
  2. Inserción al azar: se inserta el vector en el cromosoma al azar. El gen conservará ambos genes: el de resistencia a neomicina y de la timidina kinasa lo mas fácil q no se exprese pq no tiene promotor.CLAS GRISES
  3. No inserción: no se inserta el vector. CLAS BLANCAS
  1. Quieres tener clas rosas (a)  quieres eliminar aquellas que no tienen el gen de la resistencia y q tienen el gen de la timidina.  Para ello echas análogo a la neomicina se eliminan todas las clas q no tienen el gen de la resistencia a la neomicina (BLANCAS).  Después echas un antiviral  q elimnia las clas q tienen el gen de la timidina-kinasa ( GRISES).
  1. Te quedan clas ROSAS: con gen de rla resistencia a la neomicina y q no tienen gen de la timidina kinasa.
  1. Se cogen dos razas de ratón:
  1. Hembra: dominante del egn agouti q hace q el pelo del ratón sea marrón.  Sacamos las  clas ROSAS con el VECTOR Q queremos del ratón marrón.  
  2. Hembra: sacamos blastocisto de ratón de pelo negro son gen agouti.
  3. Unimos clas ROSAS del raton marrón+ blastocisto del ratón negro.

Implantamos blastocisto QUIMERA ( clas de dos razas distintas)  en “madre de alquiler”: ratón.

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