Practica Examen coproparasitoscopico Técnica de Faust.

Nombre del Alumno: _______________________________________ Fecha: _______________

Docente: QFB. Antero Fernando Saldívar Martínez.

Submodulo II: Identifica microorganismos con base en técnicas parasitológicas (IMBTP)

COPROPARASITOSCOPICO.

CONCENTRACION POR FLOTACION TECNICA DE FAUST.

OBJETIVO DE LA PRACTICA.

Desarrollar y comprender la técnica, con el fin de diferenciar e identificar los parásitos en una muestra.

INTRODUCCION.

La concentración de parásitos por FLOTACION en muestras fecales permite comprobar la existencia de quistes de protozoos, huevos o larvas de helmintos, aún cuando estén presentes en pequeñas cantidades. Esta técnica se basa en la propiedad que tienen las soluciones de densidad mayor, para hacer flotar objetos menos densos. Por su sencillez se puede utilizar en encuestas en el campo. El método de Faust, con ZnSO4, es uno de los más utilizados, aunque es poco eficaz para huevos pesados como los de Tremátodos o como los huevos no-fértiles de Ascaris. Tampoco es muy efectivo para muestras de heces ricas en grasas. Este método puede realizarse en muestras recientes, refrigeradas o fijadas con formol (5% ó 10%).

MATERIALES Y REACTIVOS.

-Gradilla                -Tubos de centrifuga                        -Gasas                        -Embudo

-Soporte universal        -Anillo de hierro                        -Portaobjetos                -Cubreobjetos

-Pizeta                        -Pinzas                                        -Centrifuga                -Aplicadores de madera

-Abatelenguas                -Pipeta de 5 ml.                        -Pipetor                -Contenedor de muestra

-Gasas de 10 x 10        -Asa bacteriología o gotero                -Mechero

-Agua destilada        -Solución de ZnSO4                        -Éter Sulfúrico                -Solución de Lugol

PROCEDIMIENTO

CONCENTRACION DE PARASITOS POR FLOTACION.

1. Con un abatelenguas se toman aproximadamente 1 g de heces (el tamaño de un cacahuate) y se deposita en un vasito que contenga de 10 a 15 ml de agua de la llave y se mezclan con un aplicador.

1. La suspensión se filtra a través de una coladera o malla o gasa y se recibe el filtrado en un tubo de centrífuga de      14 ml. Se le adicionan 1-2 ml de éter. Tape con un corcho o tapón y agite vigorosamente. Adicione agua hasta que la muestra quede a 1cm por debajo del bordo superior del tubo.

1. Centrifugue por 45 segundos a 2500 rpm.  Rompa cualquier acúmulo que pudiera haberse formado en la       parte superior y decante el sobrenadante.

1. Añada 2 a 3 ml de agua y agite para resuspender el sedimento. Se resuspende nuevamente el sedimento, adicionando agua poco a poco, hasta que quede la muestra a 1 cm del borde superior del tubo. Se centrifuga de nuevo.  

1. Se decanta el sobrenadante y se agregan al sedimento 2 a 3 ml de sulfato de zinc (densidad: 1.180. Equivale a 330 g de sulfato de zinc en 1 litro de agua), moviendo con un aplicador para resuspender.  Se agrega más sulfato de zinc hasta que llegue a unos 0.5 cm del borde superior del tubo.  

1. Se centrifuga a 2300 rpm durante 2 min. y NO SAQUE EL TUBO.

1. Sin sacar el tubo de la centrífuga, recoja algunas gotas del material que flota en la superficie con un asa de platino o gotero (se debe cuidar que el asa no penetre demasiado bajo la superficie).

1. Se deposita la gota en un portaobjetos y se monta con una gota de lugol entre porta y cubre.

1. Se observa al microscopio, a 10X y 40X.

1. Haga dibujos detallados de los parásitos observados.

1. Discuta las dificultades de la técnica y dibuje los parásitos encontrados. Compare con la literatura para identificarlos. Concluya cuales parásitos identificó.

RESULTADOS, DISCUSION Y CONCLUSIONES.

Referencias:-

Academia de Microbiología y Parasitología Dpto. Ciencias Químico Biologicas.ICB, UACJ... (2012). Manuel de Practicas de Parasitología Clínica. 26 de octubre de 2016, de Universidad Autónoma de Ciudad Juárez Sitio web:

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