Sección 001 Laboratorio de Estructura y Función Celular

Benemérita Universidad Autónoma de Puebla

Facultad de Ciencias Biológicas

Sección 001

Laboratorio de Estructura y Función Celular

Profesora: Adriana Ramírez Vargas

Equipo 4

Shadai Bermúdez Novoa

Miriam López Aluci

Diana Meneses Delgado

Jocabed Ramírez Cruz

Practica 1

PRÁCTICA No. 1         

CUIDADO DEL MICROSCOPIO Y DIVERSIDAD CELULAR

INTRODUCCION:

El tamaño de las células escapa al poder de resolución del ojo que se define como la distancia mínima entre dos puntos para que puedan verse como objetos separados. El descubrimiento de las células fue posible a partir de la invención del microscopio compuesto. El conocimiento de la célula y el papel que juega en la formación de los tejidos animales y vegetales ha avanzado de manera paralela al perfeccionamiento de las técnicas de microscopía. Una célula animal típica mide entre 10 y 20 mm de diámetro, unas cinco veces menos que el diámetro de la partícula más pequeña observable por el ojo humano. Se han desarrollado diferentes sistemas de iluminación para el microscopio, que permiten observar células o tejidos vivos, o fijados y teñidos. El microscopio de campo claro es útil para la observación de material teñido, la tinción incrementa el contraste entre la muestra y el medio que lo rodea. La imagen formada resalta sobre un fondo blanco brillante. En este sistema, el trayecto que sigue la luz va desde la lámpara hasta el ojo del observador pasando por un sistema de lentes que la alinea y la concentra.

OBJETIVOS:

1. Conocerá las técnicas del sistema óptico del microscopio
2. Conocerá y aplicar la metodología adecuada para la observación correcta de las laminillas citológicas.
3. Observará la diversidad celular en diferentes tipos de ambientes.

DESARROLLO:

1. PREPARACIÓN DE LAMINILLAS FRESCAS

1. Frotis de sangre.

• Desinfectar con un algodón impregnado de alcohol, la superficie del dedo anular.
• Realizar una punción con una lanceta estéril, presionar el dedo hasta que se acumule una gota de sangre y colocarla en el extremo de un portaobjetos limpio.
• Con ayuda de otro portaobjetos correr la gota de sangre por la superficie del vidrio hasta el otro extremo del portaobjetos y dejar secar al aire la muestra.
• Teñir el frotis de sangre con colorante de Wrigth durante 3 min, escurrir en la tarja y eliminar el exceso bajo el chorro del agua.
• Dejar secar el frotis al aire y observar al microscopio.

1. Raspado del epitelio bucal.

• Limpiar con un hisopo de algodón la parte interna de la mejilla, desechar el hisopo y posteriormente raspar la misma zona con un palillo de madera limpio y frotar la muestra obtenida a todo lo largo de un porta-objetos limpio.

• Dejar secar al aire la laminilla y teñir con azul de metileno por 5 min, escurrir en la tarja y eliminar el exceso bajo el chorro del agua.

• Poner un cubreobjetos sobre el frotis bucal y observar al microscopio.

1. Microorganismos del agua.

Tomar una gota de agua estancada en un portaobjetos limpio, agregar una gota del colorante azul de metileno, poner un cubreobjetos y observar al microscopio microorganismos del agua.

1. Micelios de Hongos.

Poner a la flama directa de un mechero un asa bacteriológica hasta el “rojo vivo”, enfriar y tomar una muestra de un cultivo de hongos microscópicos, frotar en una gota de agua sobre un portaobjetos, dejar secar al aire y teñir con azul de metileno. Observar al microscopio hifas y esporas

1. LIMPIEZA DEL MICROSCOPIO

1. Limpiar con un trapo húmedo la superficie del microscopio sin tocar los lentes.
2. Tomar un trozo de papel arroz e impregnarlo con una solución de Isopropanol-Acetona para limpiar los lentes objetivos y colares del microscopio. La limpieza de los lentes debe realizarse con movimientos en espiral o en círculos.
3. Para la limpieza de las laminillas a observar solo se humedece un papel absorbente en agua y se frota para eliminar polvo o impurezas.
4. Una vez efectuada la limpieza del microscopio se puede iniciar la observación de las laminillas.

1. OBSERVACIÓN AL MICROSCOPIO

1. Colocar la laminilla fresca o permanente en la platina del microscopio, ajustar la luz moviendo el diafragma y empezar a enfocar con el objetivo de menor aumento (4x), con movimientos suaves del tornillo micrométrico y micrométrico.
2. Una vez logrado el enfoque con el primer objetivo, rotar el revolver para cambiar el siguiente objetivo sin mover la platina, volver a enfocar hasta llegar al objetivo Seco fuerte (40x) y antes de rotar a la lente de Inmersión (100x) por completo colocar sobre la laminilla una gota de aceite y rotar por completo el objetivo de 100x, enfocar y observar.

Resultados:

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