BIOPROSPECCIÓN DE MICROORGANISMOS EN LAS COSTAS DEL ECUADOR

UNIVERSIDAD TÉCNICA DEL NORTE

FACULTAD INGENIERIA EN CIENCIAS AGROPECUARIAS Y AMBIENTALES

CARRERA DE INGENIERIA EN BIOTECNOLOGIA.

PROYECTO INTEGRADOR 6TO NIVEL

[pic 3]

TEMA:

[pic 4]

BIOPROSPECCIÓN DE MICROORGANISMOS EN LAS COSTAS DEL ECUADOR

[pic 5]

INTEGRANTES:

Almeida Mayra

Armas Dayanna

Reyes Pamela

Quiñonez Alexandra

Vizcaíno Gissela

PLANIFICACIÓN

1. DATOS GENERALES

1. IDEAS Y PREGUNTAS DE INVESTIGACIÓN

• MICROBIOLOGÍA

Primera Idea

En las microalgas marinas nativas de la Costa se requiere caracterizar sus propiedades bioquímicas y fisiológicas en cultivos discontinuos. Es importante evaluar la influencia de diversos parámetros ambientales con la finalidad de integrar el conocimiento en relación a las condiciones que optimicen la biomasa microalgas y la de los productos de interés comercial. (Bermudez, 2002)

Segunda Idea

Al ser las microalgas los principales productores primarios de los ecosistemas marinos, en la que mediante el aislamiento e identificación de los compuestos bioactivos provenientes directamente del metabolismo primario, tales como proteínas, ácidos grasos, vitaminas y pigmentos, o sintetizados del metabolismo secundario. Representaran un reservorio de moléculas y metabolitos con potencial aplicación biotecnológica. (Gómez, 2018)

1.- ¿Cuál es la clasificación de las microalgas y hay manera de identificarlas?

Se han estudiado los detalles morfológicos de microalgas con el uso del microscopio electrónico, lo que ha permitido observar la fina estructura de la célula a escala y sus constituyentes (Barona, 2014):

[pic 6]

Tabla 1 . Clasificación de  microalgas. (Barona, 2014) 

2.- ¿Existen una gran variedad de medios de cultivo para microalgas? 

Un cultivo puede ser definido como un ambiente artificial en el que las microalgas crecen. En teoría las condiciones del cultivo deben semejarse al ambiente natural donde se desarrolló.

MEDIOS DE CULTIVO EN CONDICIÓN AUTRÓFICA

• Medio Basal de Bold

[pic 7]

Tabla 2 . Medio Basal Bold . (Barona, 2014)

• Medio Suoeka

Se compone de los elementos: KH2PO4 8,3Mm; K2HPO4 5,3Mm; MgSO4.7H2O 0,25Mm; CaCL2.2H2O 0,133Mm; Trazas Hutner 1x; NH4Cl 9,35Mm. Trazas Hutner 200x: 12,7g de EDTANa.2H20 en 250ml de agua, se disuelven uno a uno en su orden los siguientes reactivos en 500ml de agua a 100°C: 2,28g de H3BO3; 4,40g de ZnSO4.7H2O; 1,02g de MnCl2.4H2O; 1,00g de FeSO4.7H2O; 0,32g de CoCl2.6H2O; 0,32g de CuSO4.5H2O; 0,22g de (NH4) MoO24.4H2O. Se mezclan las soluciones anteriores, se lleva a 100°C y se ajusta el pH a 6,8 con KOH al 20%. (a una temperatura inferior a 70°C). (Ortiz, 2011)

• Medio f/2 de Guillard

Contiene: 1ml de solución que contiene 0,08g de CoCl2.6H2O y 0,8g de CuSO4.5H2O en 100ml de agua destilada; que se agrega a una solución de 800ml con: 0,2g de FeCl3.6H2O, 0,06g de ZnSO4.7H2O, 0,12g de MnSO4.H2O, 0,03g de Na2MoO4.2H2O; 1ml de solución de 1,2g de EDTA-Na en 900ml de agua destilada. Se ajusta el pH a 7,0 y se añade 10g KNO3 y 1,4g de KH2PO4. Se lleva a volumen final de 1litro y se lleva a 100°C (Ortiz, 2011)

3.- ¿Existen diferentes métodos para el aislamiento de microalgas?

En la literatura se describen tres técnicas para aislamiento de microalgas:

• Aislamiento por rayado en agar por agotamiento

Se toma una gota de la muestra de  microalgas y se raya suavemente sobre una placa de agar por agotamiento con un asa bacteriológica. Este procedimiento se realiza por duplicado y en una de ellas se agrega  silicatos. Las placas se sellaron con Parafilm® y se incuban a 23°C durante 6-12 días hasta observar crecimiento de colonias.

• Aislamiento por pipeteo

Se coloca una gota de la muestra en un portaobjetos. En otro portaobjetos se colocaran 5 gotas de F/2 en hileras. Se alarga la punta de una pipeta con ayuda de pinzas y mechero, con el fin de obtener un diámetro reducido. Al microscopio se selecciona el individuo a aislar y se succiona suavemente con la pipeta y la pera. Se coloca en la primera gota de la hilera y se pasa de gota a gota con el fin de lavar el individuo y reducir o eliminar bacterias y material adicional. Finalmente, el individuo se deposita en una placa . La placa se coloca en la incubadora y se revisa periódicamente bajo microscopio para observar el crecimiento de la microalga.

...