Hongos morfología microscópica y colonial

COLORANTES PARA ORGANISMOS FUNGICOS

Tinciones simples:

• Safranina – Los elementos fúngicos setiñen de color rojo intenso, y el resto del campo toma un tono incoloro o rosa pálido.

• Azul de algodón – El azul de lactofenol tiene tres funciones importantes a la hora de observar hongos del tipo mohos obtenidos por aislamiento o de medios inoculados.

• Anaranjado de Acridina – Se utiliza para la detección de bacterias y hongos en muestras clínicas  Puede utilizarse un microscopio con accesorios  fluorescentes como el de Reichert Zetopan.

• Tinción con Eritrocina. - Útil para la observación de gránulos causados por: Nocardia, Madurella grisea, M. mycetomatis.

• Solución de eritrocina.

Tinciones diferenciales: Son técnicas que utilizan dos o más colorantes y/o principios activos.

• Tinción de Gram
• Tinción Ziehl-Neelsen (Ácido-Alcohol-Resistentes) 
• Técnica de Schiff – La tinción PAS (periodicacid-Schiff) es uno de los métodos químicos más empleados en histología. Los filamentos fúngicos, conidias y esporas aparecen rojos o rosas intensos.
• Tinción de Giemsa y Wright – Utilizada para levaduras intracelulares, que generalmente se encuentran dentro de los macrófagos o monocitos.

Tinciones especiales

• Tinción negativa con tinta china – Esta tinción es especial  para visualizar a Cryptococcus neoformans.
• TincióndeEsporas - Tinción de ascas y ascoposrasde todos los hongos, y especialmente útil cuando, se trata de visualizar levaduras en los Hemiascomycetes, ya que con las tinciones habituales es muy difícil distinguir sus  formas sexuales.
• Tinción de Gomori-Grocott (Metenamina de plata). Con esta técnica los hongos se tiñen de color negro al igual que una bacterias; la mucina adquiere un color gris oscuro; las  partes internas del micelio, rosa oro; el fondo aparece de color verde claro.
• Blanco de carcoflour – El calcofloúr es un flourocromo que se une  a polisacáridos. El colorante  fluorece cuando se expone a una fuente de luz ultravioleta de onda corta o capaz de producir la luz.
• Negro de clorazol E  - Es un colorante que permite visualizar rápidamente y nítidamente las estructuras micoticas uniéndos eespecialmente a la quitina.

MORFOLOGIA MICROSCÓPICA Y COLONIAL

Microsporum canis

Morfologia microscópica

Tiene abundante micelio, con hifas del- gadas, tabicadas y rami cadas, que dan el aspecto de un “árbol”; las hifas pueden tener la modalidad de raquetas intercalares, similares a “huesos de perro”. Presenta gran cantidad de macroconidios o macroaleurioconidios cercanos a 50 a 100 μm de largo por 10 a 20 μm de ancho, en forma de huso, “hojas” o “barcos tailandeses”; los macroconidios poseen una membrana gruesa (4-6 μm) y en ocasiones son espiculadas o equinuladas (gránulos), con septos o lóculos bien de nidos en forma de recuadros; por lo regular son de 6-12 μm. La mayoría de cepas con- tienen pocos microconidios piriformes de 3 a 5 μm de largo en promedio, dispuestos en forma alterna. [pic 1]

Morfologia colonial

[pic 2]Las colonias son ilimitadas, de aspecto ve- lloso, plano, radiales, de color amarillo con micelio blan- co que se adhiere con facilidad a las paredes de los tubos; al reverso presenta un pigmento amarillo-naranja, que se difunde a través del medio. Microsporum canis se desarrolla en un tiempo promedio de seis a ocho días a 25-28 °C en medio de Sa- bouraud agar.

Microsporum gypseum

Morfologia microscópica

[pic 3]Tiene poco micelio delgado y ta- bicado con gran cantidad de macroaleurioconidios de aproximados 50 a 120 μm de largo por 10 a 20 μm de ancho, en forma de huso, o de “hojas de árbol”, mismos que tienen una membrana delgada (5 a 8 μm), que puede presentar pequeñas espículas o equínulas. Los macroa- leurioconidios forman septos o lóculos que se extienden de membrana a membrana y, por lo regular, son de 4 a 6 unidades. La mayoría de las cepas tienen escasos mi- croaleurioconidios piriformes de 4 a 6 μm de largo.

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