PRÁCTICA DE IDENTIFICACIÓN DE MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS Y PERIFITÓN EN EL RÍO FRÍO EN LA RESERVA DEL DIVISO.

PRÁCTICA DE IDENTIFICACIÓN DE MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS  Y PERIFITÓN EN EL RÍO FRÍO EN LA RESERVA DEL DIVISO.

1. OBJETIVO DEL LABORATORIO

falta.

1. LOCALIZACIÓN GEOGRÁFICA

Descripción del lugar El centro ambiental el Diviso es un centro de educación ambiental e investigación de especies de flora y fauna como son en ardilla, mono aullador, pájaros carpinteros, en otras especies,  están conformadas por grupos de campesinos de la región, este lugar cuenta con riqueza hídrica como lo es la cuenca hidrográfica, el río frío.

Este reservorio cuenta con una ubicación Nororiente del Departamento de Santander en el kilómetro 22 de la vía entre Bucaramanga y Cúcuta, en el corregimiento de Corcova del municipio de Floridablanca. El área de este lugar es de aproximadamente 100 hectáreas de bosque natural, con una temperatura cerca de 16 grados centígrados, y la temperatura del agua está cerca de los 12 grados centígrados.

 El Diviso es una reserva forestal, es decir, es una zona de protección por la Corporación para la Defensa de la Meseta de Bucaramanga (CDMB), el donde también cuenta con entrada privada al Parque Natural Regional Cerro La Judía.

1. FECHA DE ANÁLISIS

16 y 20 de mayo.

1. ALGAS PERIFÍTICAS PERIFITON

1. COMUNIDAD BIOLÓGICA MUESTREADA

Son los productores primarios y, por lo tanto sensibles, al cambio ambiental en ambientes loticos. Esta cualidad ha adquirido un valor importante en el estudio de los lagos, ya que se utilizan como bioindicadores debido a que miden y cuantifican la magnitud del estrés, así como las características del hábitat y la respuesta ecológica al daño de un ecosistema (De la Lanza et al. 2000).
Las microalgas que lo conforman son sensibles a las fluctuaciones internas del cuerpo de agua y a las condiciones ambientales que prevalecen, viéndose afectada su distribución (Margalef 1983).

1. Metodología de colecta

1. Se define en base a los objetivos del estudio y en base a los sustratos disponibles a lo largo del tiempo de la zona hídrica en la que se hará el estudio de calidad (Río Frío).
2. Se debe tener en cuenta la generalidad, diversidad, eficiencia de muestreo y respuesta a un estrés físico o químico de las microalgas del perifiton para su uso en evaluaciones biológicas. Para los estudios de Línea Base o inventarios biológicos, la metodología se basa en tipos de sustrato disponibles y para monitoreos ambientales en sustratos duraderos en el tiempo.

1.   Técnica de muestreo

Equipos y materiales

• Cepillo de dientes
• Pincel de pelos de marta N° 0
• Frascos de plástico
• Etiquetas
• Libreta de campo
• Agua destilada

1.  Ambiente lotico

• Se prefiere zonas sin sombra.
• Los sustratos son elegido únicamente de zonas, no son los más representativos, ya que es posible que no se haya desarrollado una comunidad madura.
•  De preferencia las muestras deben ser obtenidas del punto medio del río, en zona de corriente y no en la orilla.

1. Técnica de muestreo

De-acuerdo a la zona de colección lotico, debe ser:

• Preferiblemente en  zonas de muestreo sin sombras
• El método de colección se ejecutará en el punto medio del cuerpo hídrico (comunidades maduras)
• Se evitan la obtención de substratos emergidos

1.  Tipos de substratos que se muestrearán

Según las condiciones ecológicas del sitio de muestreo es de gran necesidad muestrear los siguientes substratos de acuerdo con el procedimiento aquí descrito:

• Substratos duros removibles (Rocas)
• Substratos duros no removibles (Rocas mayores a 256 mm, arbustos y raíces)
• Substratos blandos (macro algas, plantas vasculares acuáticas, hojas sumergidas)

1.  Procedimiento

Sustratos duros removibles (rocas)

• Raspar de la superficie de las rocas.
• Se recomienda sobre todo en sustratos con superficie rugosa.
• Proceder luego del raspado a realizar un cepillado suave de la zona muestreada y enjuagar con agua destilada, ya que algunas microalgas pueden haberse quedado en las hendiduras.
• Penetrar el cepillo de dientes en el frasco con agua destilada (100 ml) y agitar para transferir la muestra de perifitón  al frasco ámbar

• Destinar el volumen correspondiente de fijador a la muestra.

• Etiquetar la muestra
  
• Conservar de la muestra

Sustratos duros no removibles (rocas mayores a 256 mm, raíces)

• Raspar  una parte determinada de la roca.

• Limpiar la zona del sustrato po lo menos 8cm2
  
• .Cepillar la superficie de los substratos, raspar una zona aproximada de al menos unos 8 cm2
  
• Penetrar el cepillo de dientes en el frasco con agua destilada (100 ml) y agitar para transferir la muestra de perifitón  al frasco ámbar

• Destinar el volumen correspondiente de fijador a la muestra.

• Etiquetar la muestra
  
• Preservar de la muestra

Sustratos blandos (macro algas, plantas vasculares acuáticas, raíces)

• Elegir los substratos de las zonas soleadas con corriente

• Excluir cualquier tipo de contaminación de los substratos

• Cepillar la superficie de los substratos en  una zona aproximada de al menos unos 8 cm2

• Penetrar el cepillo de dientes en el frasco con agua destilada (100 ml) y agitar para transferir la muestra de perifitón  al frasco ámbar

• Aplicar el volumen correspondiente de fijador a la muestra.

• Etiquetar la muestra y conservar de la muestra

1.  Área de colecta

Para hacer un estudio cuantitativo es necesario conocer el área de recolección de todos los sustratos, para el ingreso a la zona y proseguir con los pasos dados para la obtención del perifitón.

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