Quimiotaxis

Universidad Nacional Autónoma de México Facultad de Ciencias

Laboratorio de biología de procariontes

Práctica: Quimiotaxis

José Javier Baltazar Zavaleta Brenda Melisa Medina Alvarado Berenice Cruz González

Introducción:

En el mundo de los microorganismos, algunas especies bacterianas pueden moverse gracias a que poseen flagelos, esta es una estructura muy delgada y semirrígidas, alcanzando casi 20nm y de ancho mide entre 15—20nm, este apéndice locomotor le ayuda a realizar movimientos voluntarios, que es conocido como la quimiotaxis .

La quimiotaxis es la relación de algunas células y microorganismos ante la presencia de agentes químicos o físicos en el medio ambiente. Este fenómeno permite que los microrganismos se dirijan hacia zonas de mayor concentración de sustancias alimenticias y al igual alejarse de lugares con elementos tóxicos, por lo tanto es muy importante para la supervivencia y el desarrollo de los microorganismos. Cuando el movimiento que impulsa la quimiotaxis es hacia el sitio donde existe una concentración más alta de agentes que favorecen su desarrollo, se habla de quimiotaxis positiva, en cambio sí es desplazada hacia la dirección contraria, es quimiotaxis negativa.

Los flagelos y la quimiotaxis están estrechamente relacionados. Los flagelos han sido una adaptación para mejorar el movimiento de las bacterias hacia los gradientes químicos del ambiente, produciendo y hacienda posible lo que conocemos como quimiotaxis.

Propósitos:

Demostrar la capacidad de desplazamiento de las bacterias en respuesta a los estímulos ambientales.

Conocer la importancia y como funciona de la quimiotaxis en los microorganismos.

Material

• 100ml de cada una de las sustancias estimulantes a ensayar (glucosa 1 M; acetato de amonio 0.5 M)

• Solución bacteriana (Aeromonas hydrophila)

• Micropipeta de 1 ml

• Micropipeta de 100 ul

• Puntas para micropipeta

• Vortex

• Mechero

• Vidrio de reloj

• Tubos capilares

• Jeringas desechables de 1 ml

• Gradilla

• Tubos con 9 ml de SFS al 0.85%

• Cajas de Petri con agar de soya y tripticaseína (TSA)

• Bastones de siembra estériles

Procedimiento:

1.-De un cultivo previo de sepa a analizar se tomó una azada y se detienen las células en un tubo estéril con 2ml de agua estéril. El cual se mezcló en el vortex.

2.-En el vidrio de reloj estéril, se vertió de 1 a 2 ml de la suspensión bacteriana.

3.-Se tomaron dos tubos capilares estériles y se llenaron hasta la mitad con las soluciones a probar.

4.-Se colocaron los tubos capilares conteniendo el medio estimulante sobre el vidrio de reloj, de tal manera que solo un extremo quedo dentro de la suspensión bacteriana.

5.-Despue de que se dejó pasar una hora, se retiraron con cuidado los capilares, cuidando no que no se perdiera su contenido.

6.-Se vacío el contenido del capilar en un tubo de ensayo con 10ml de disolución fisiológica salina al .85% (SFS). Se tomó aire, con una jeringa desechable de 1ml, cerca del mechero y se introdujo en el capilar, el aire empujo todo el contenido del capilar al tubo de ensayo.

7.-En el segundo tubo con 9 ml de (SFS) se re suspendió 1ml del contenido de la dilución 1, y se mezcló con en el vortex, y esta fue la disolución 2. Y se repitió el procedimiento para cada una de las sustancias estimulantes.

8.-En una caja de Petri se etiquetaron las muestras y se incubaron a una temperatura

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