Respiración aeróbica. Observación y cuantificación de producción de CO2 en animales y vegetales

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA

SEDE MEDELLÍN

Respiración aeróbica.

Observación y cuantificación de producción de CO2 en animales y vegetales.

María Fernanda Aguirre Arias, Diana Carolina Betancur Mesa, Valentina Posada Carmona.

Ingeniería Biológica, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia Sede Medellín

mfaguirrear@unal.edu.co -  dbetancurm@unal.edu.co - vposadac@unal.edu.co

Febrero Lunes (18), 2019

1. Introducción

La respiración es un proceso en el cual un compuesto exógeno actúa como aceptor final de electrones, requiriendo para esto una cadena de transporte de electrones, donde en el paso de electrones a lo largo de la cadena hacia su aceptor final, se genera un tipo de energía potencial llamada fuerza motriz de protones (FMP) que se emplea para sintetizar ATP a partir del ADP y Pi. En las células aerobias la energía se obtiene de la oxidación completa del sustrato, con el oxígeno molecular que en general actúa como aceptor final de hidrógeno. [1]

La respiración vegetal es el conjunto de reacciones celulares mediante las cuales los carbohidratos sintetizados por medio de la fotosíntesis son oxidados a CO2 y H2O. La energía liberada es transformada mayoritariamente en ATP. Los lípidos y las proteínas también pueden ser oxidados, aunque por lo habitual, en menor medida que los carbohidratos, que son los principales sustratos respiratorios de las plantas. [2]

En la práctica se tenía como objetivos observar y cuantificar la respiración aeróbica en semillas remojadas y no remojadas de maíz pira, y medir la cantidad de dióxido de carbono producido por animales y plantas acuáticas bajo diferentes condiciones, como resultado de la respiración.

2. Metodología

Para iniciar, se propuso un montaje de respiración aeróbica en vegetales (semillas), donde se rotularon diez tubos de ensayo, soportados por la gradilla, con medio acuoso similar. Primero, de manera individual, se adicionaron 10mL de agua destilada, después, dos gotas de fenolftaleína y, posteriormente, dos gotas de hidróxido de sodio (NaOH) al 2%. Consecuente a esto, en cada recipiente se introdujo una semilla de maíz pira: los tubos enumerados del 1 al 5 acogieron aquellas que un día previo a la práctica estuvieron remojadas en agua; mientras que, por su parte, las semillas añadidas en los tubos etiquetados del 6 al 10, no. Finalmente, se mezcló por inmersión y se dejó reposar. Así pues, transcurridos 30 minutos desde su ensamble, empezaron las respectivas observaciones. Lo anterior se repitió en varias ocasiones, con tiempos de espera que oscilaban entre los 30 o 90 minutos. Para cada análisis, se realizó agitación manual.

En la segunda sesión de la práctica, respiración aeróbica en animales (pez, caracol) y vegetales (elodea), se titularon alícuotas de cinco beakers diferentes, cuatro de ellos con organismos vivos en su interior, y, el otro, en ausencia de estos. Primeramente, se mesuró el volumen de cada animal/vegetal con ayuda de una probeta en medio de agua destilada: se tomó 70mL de ésta última, se posicionó el objeto de estudio en el recipiente y se conservó el líquido desplazado como dimensión real del organismo. Posterior a ello, se agregaron 100mL de agua destilada en los beakers mencionados al principio, luego se alojó al ser vivo en este medio: un pez, un caracol y elodea en dos recipientes distintos, 20cm de extensión para cada situación. Enseguida, la boca de los contenedores fue cubierta con papel aluminio, a excepción de uno que poseía elodea, pues, adicionalmente, su cuerpo se abrigó en totalidad. Los beakers estuvieron en reposo durante una hora, en condiciones ambientales normales, descartando los dos de la elodea, ya que uno se expuso a una fuente de luz, y el otro, a oscuridad. Avanzado el tiempo, se extrajo una alícuota de 40mL de cada fuente, con dos gotas añadidas de fenolftaleína. Lo anterior, se tituló con hidróxido de sodio (NaOH) al 0.025%.

3. Resultados

a. Observación y cuantificación respiración aeróbica en vegetales (semillas).

Después de que el montaje fue establecido, y el tiempo pasó, se acogieron las características a continuación descritas (tabla 1), con sus respectivas fotografías a través de los diferentes lapsos (figura 1, figura 2, figura 3, figura 4, figura 5).

Tabla 1. Registro de color en distintos minutos.

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