Tinciones , ROJO CONGO, FULTON, ALBERT

■Método de Rojo Congo:

1. Colocar 1 gota de colorante rojo Congo en un portaobjeto bien limpio.

2. Hacer una suspensión con Klebsiella Pneumoniae

3. Dejar secar al aire y fijar al calor.

4. Adicionar mordiente de cápsula y dejar de actuar por 3 minutos.

5. Lavar con agua de la llave.

6. Dejar secar al aire

7. Observar con los objetivos 10x,40x y 100x.

La cápsula se observa como una zona brillante y clara y el fondo de color rojo.

■Técnica de Knaysi:

1. Coloca mordiente de Knaysi durante 10 minutos.

2. 2. Lavar con agua fría de la llave.

3. Colocar una gota de fucsina e inmediatamente coloca un cubre objetos , con mucho cuidado, evitando la formación de burbujas.

4. Observar al microscopio

5. observar a 10 x, 40x y 100x.

6. 6.La pared debe verse brillante bien delimitada y alrededor de la bacteria.

■ Técnica de Albert.

1. Cubrir el frotis con colorante de Albert.

2. Esperar 5 minutos.

3. Pasar por el portaobjetos con colorante el mechero.

4. Calentar aproximadamente 30 segundos. No permitiendo que hierva el colorante,

5. Lavar con agua

6. Dejar secar

7. Aplica la solución de Yodo Lugol

8. Esperar un minuto

9. Lavar con agua de la llave

10. Dejar secar

11. Observar al microscopio con los objetivos de 10x 40x y 100x

Los gránulos metacromáticos se observan de un color azul oscuro y el citoplasma verde muy claro y pálido.

■Técnica Fulton:

1. Cubrir la preparación con solución de verde de malaquita al 5% y calentar hasta que forme vapor, durante 1 minuto.

2. Lavar ocn agua de la llave.

3. Contrastar con slucion acuosa de safranina al .5% durante 30 segundos.

4. Lavar con agua de la llave

5. Dejar secar

6. Observar al miscroscopio con los objetivos de 10x , 40x y 100x.

LAS ESPORAS SE TIÑEN DE COLOR VERDE Y EL CITOPLASMA ROJO.

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