SSPráctica. Aislamiento de microorganismos
Enviado por Adrian Hernandez • 27 de Marzo de 2024 • Apuntes • 2.495 Palabras (10 Páginas) • 55 Visitas
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SSPráctica 11. Aislamiento de microorganismos
Actividades previas. Cuestionario
1.-Completa la tabla siguiente con al menos 3 métodos o formas para aislar microorganismos
Nombre de la técnica | Fundamento | Material empleado para lograr el aislamiento | |||
Por diluciones | Se hace uso de tubos o | Lápiz graso, masking tape, dos | |||
matraces con solución | cajas de petri con agar nutritivo, asa | ||||
salina o amortiguadora | de siembra, muestra con población | ||||
con la que se preparan | microbiana mixta, mechero,gradilla, | ||||
diluciones sucesivas del | baño de temperatura controlada a | ||||
inóculo, disminuyendo | 45 °C, dos tubos de ensayo 22x174 | ||||
progresivamente la | con 18 mL de agar nutritivo fundido | ||||
cantidad de | y mantenido en el baño de 45 °C. | ||||
microorganismos, para | |||||
que al reproducirse se | |||||
forme una clona. | |||||
Se emplean medios de | Lápiz graso, masking tape, dos | ||||
Por agotamiento | cultivo sólidos y siembra | cajas de petri con agar nutritivo, asa | |||
por estría de cuadrantes, | de siembra, muestra con población | ||||
el inóculo disminuye | microbiana mixta, mechero,gradilla, | ||||
progresivamente en cada | baño de temperatura controlada a | ||||
estría sucesiva. Las | 45 °C, dos tubos de ensayo 22x174 | ||||
estrías iniciales | con 18 mL de agar nutritivo fundido | ||||
presentan un desarrollo | y mantenido en el baño de 45 °C. | ||||
confluente, en las últimas | |||||
estrías se desarrollan | |||||
colonias aisladas. | |||||
Captura | de | un | solo | Para purificar | Lápiz graso, masking tape, dos |
individuo | microorganismos | cajas de petri con agar nutritivo, asa | |||
grandes como los | de siembra, muestra con población | ||||
protozoos y las algas. | microbiana mixta, | ||||
Implica el uso de una | mechero,gradilla,pipeta capilar,dos | ||||
pipeta capilar y la | tubos de ensayo 22x174 con 18 mL | ||||
subsiguiente | de agar nutritivo fundido y | ||||
transferencia de este | mantenido en el baño de 45 °C. | ||||
individuo a través de | |||||
varios lavados en | |||||
volumen de medio esteril | |||||
con el fin de eliminar a |
[pic 5]Facultad de Química, Departamento de Biología 1515 Microbiología Experimental[pic 6]
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los microorganismos de menor tamaño. |
2.- Busca la composición química de los siguientes medios de cultivo. Para facilitar la localización de la información Separa cada medio por colores
Nombre de medio de cultivo | Formula en gramos por litro | Función de cada ingrediente |
Agar anaeróbico de Brewer | Agar bacteriológico 15g. Peptona de caseína 17.5 g. dextrosa 10 g. L-cisteína 0.4 g. Azul de metileno 0.002 g. Cloruro de sodio 2.5g. Tioglicolato sodico 2g. Peptona de soja 2.5 g y Sulfoxilato formaldehido de sodio 1g. | La peptona de caseína y la peptona de soja: Proporcionan nitrógeno, vitaminas, minerales y aminoácidos esenciales para el crecimiento. Dextrosa:Carbohidrato fermentable que proporciona carbono y energía. Tioglicolato sódico y el formaldehído sulfoxilato sódico: Agentes reductores que generan bajo potencial de oxidación-reducción, asegurando así buenas condiciones anaeróbicas. Azul de metileno:Indicador redox, el color azul indica la presencia de oxígeno |
Agar cerebro corazón | Infusión de cerebro de ternera 200 g. Infusión de corazón 250 g. Peptona:10 g. Cloruro de sodio 5 g. Glucosa 2 g. Fosfato disódico 2.5 g y Agar bacteriológico 2.5 g | La infusión de cerebro de ternera, la infusión de corazón vacuno y la peptona: Fuente de carbono, nitrógeno y vitaminas. Glucosa: Hidrato de carbono fermentable. Cloruro de sodio: Mantiene el balance osmótico. Fosfato disodico: Buffer. Agar: Agente solidificante |
Agar sangre | Infusión de músculo de corazón 375 g. Peptona 100 g. Cloruro de sodio 5 g y Agar 15 g. | La infusión de músculo del corazón y peptona: Otorgan al medio un alto valor nutritivo. Cloruro de sodio: Mantiene el balance osmótico. Agar:Agente solidificante. |
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