Determinación de Tasa de Filtración de Brachionus Sp. En diferentes concentraciones de (2, 4 y 6 ml/ l-1) de Scenedesmus acutus, en condiciones de Laboratorio
Enviado por Edward J R Wikus • 18 de Noviembre de 2015 • Informe • 1.496 Palabras (6 Páginas) • 110 Visitas
Determinación de Tasa de Filtración de Brachionus Sp. En diferentes concentraciones de (2, 4 y 6 ml/ l-1) de Scenedesmus acutus, en condiciones de Laboratorio.
Resumen
Este trabajo consiste en el cultivo de Brachionus sp, que por sus cualidades de rápido desarrollo, facilidad de cultivo y calidad nutritiva., en relación al hábitat es variable, ya que soporta amplios rangos paramétricos y está ampliamente distribuida, y esta distribución se debe a la alta longevidad y resistencia de huevos latentes; así mismo Brachionus sp. es una especie que no selecciona su alimento (polífago), es un filtro-alimentador, se puede alimentar de microalgas: Cianoficeas, Chloroficeas, Pheoficeas, etc., bacterias y levaduras; pues de esta manera. Durante el desarrollo experimental se ensayaran 3 concentraciones (2, 4 y 6 ml. L-1) con sus respectivos tratamientos con 10 individuos respectivamente, utilizando la microalga scendesmus acutus, la cual se evaluó la tasa de filtración que tiene cada individuo, para ello se realizaron tres repeticiones por cada tratamiento con Brachionus sp; se realizaron conteos por cada media hora, tomando una muestra de cada uno de los tratamientos y repeticiones, para ser llevado al microscopio y así realizar el conteo con la cámara Neubauer.
Palabras claves: Microalgas: Cianoficeas, Chloroficeas, Pheoficeas. Latente, polífago.
Abstrac
This work is growing Brachionus sp, whose qualities of rapid development, ease of cultivation and nutritional quality., In relation to habitat it is variable, as it supports parametric broad ranges and is widely distributed, and this distribution is due to high longevity and resistance latent eggs; Likewise Brachionus sp. It is a species that does not select its food (polyphagous) is a filter-feeder, you can feed microalgae: cyanobacteria, Chloroficeas, Pheoficeas, etc., bacteria and yeasts; because in this way. During experimental development 3 concentrations (2, 4 and 6 ml. L-1) with their respective treatments rehearse 10 individuals respectively, using the microalga scendesmus acutus, which filtration rate that each individual is assessed for it three replicates were performed for each treatment Brachionus sp; counts were made for each half hour, taking a sample from each of the treatments and repetitions, to be taken under a microscope and thus perform the Neubauer counting chamber.
Keywords : Microalgae : cyanobacteria , Chloroficeas , Pheoficeas . Latent polífago.
Introducción.
El Phylum Rotífera comprende un grupo de organismos filtro alimentadores microscópicos (pluricelulares). La mayoría de las especies de este grupo pasan su vida adheridas a un substrato.
Brachionus sp es una especie que no selecciona su alimento (polífago), es un filtro-alimentador, se puede alimentar de microalgas: Cianoficeas, Chloroficeas, Pheoficeas, etc., bacterias y levaduras (Hirayama, 1973 y otros). Pejler (1983) señala que no se inlcuye en su dieta las Familias Cryptomonas y Chrysophytas. Otros trabajos demuestran que sólo pueden ingerir partículas de 12–15μ en tamaño (Hirayama, 1978).
Los rotíferos del género Brachionus como filtrador no selectivo, puede ingerir partículas de alimento de 20-30 µm. En la naturaleza consumen microalgas, bacterias, levaduras y protozoarios. Los animales cultivados se alimentan mayormente con algas unicelulares y/ o levaduras. Nannochloropsis es una de las microalgas utilizadas usualmente como alimento del rotífero. Tiene un tamaño de 2-3 µm. Sin embargo también Tetraselmis e Isochrysis son de alta calidad nutricional. La levadura de pan ha sido también empleada para el cultivo de rotíferos, pero el valor nutritivo resultante de los rotíferos es muy pobre. Desde hace algunos años, existen dietas artificiales y de enriquecimiento en el mercado, las cuales son nutricionalmente completas y pueden reemplazar totalmente el uso de algas y/ o levadura.
Es filtrador no selectivo que se alimentan tanto de bacterias, así como de organismos vivos de tamaño apropiado como algas verdes microscópicas entre las que destacan Chlorella vulgaris, Sphaerocistys sp. y Haematococus pluvialis, suministrando proteínas y pigmentos , estas presentes en ambientes dulces (Castellanos, 1999).
El objetivo, es evaluar bajo condiciones de laboratorio, la tasa de filtración de los rotíferos (Brachiounus sp) en diferentes concentraciones estimada con Scenedesmus acutus.
Materiales y Métodos
Materiales proporcionados por el estudiante
- Cultivo > 1L de algas (scenedesmus acutus),
- Cultivo de brachionus sp.
- 9 botellas de vidrio de 500 ml,
- Manguera de 2 m
- 7 llaves reguladoras de aire
- 2 bombas aireadoras
Materiales proporcionados por el laboratorio
- 1 microscopio
- Láminas y laminillas
- Cámara de Neubauer
- 1 pipeta
- 1 micropipeta.
- 1 estereoscopio.
Diseño Experimental
Para la determinación de tasa de filtración, se hizo en 3 tratamientos con 3 repeticiones con concentraciones de 2ml, 4ml, 6ml repectivamente de scenedesmus acutus. El volumen líquido para cada botella fue de 100 ml, alvergando 10 rotíferos respectivamente. En cada botella se añadió aireación leve y constante por 3 horas.
Los rotíferos empleados en esta experiencia, fueron extraídos del estaque de la E.A.P Biología en Acuicultura, mediante un raspado de las raíces de eichornia sp. De las muestras recogidas, fueron seleccionados cada rotífero con la ayuda de una micropipeta. Esta cepa fue incubada en un bioreactor con iluminación de luz diurna y ligera aireación, suministrándoles la microalga chlorella sp. para su multiplicación en un lapso de dos semanas.
Con ayuda de un microspocio ópico, se observó que el cultivo de Scenedesmus acutus. Con el uso de la cámara de Neubauer, a un aumento de 40X, se determinó la cantidad de células por campo, por cada tratamiento.
Registro de Scenedesmus (cél/camp) | |||||||||
Tratamiento 1 | Tratamiento 2 | Tratamiento 3 | |||||||
Horas (min) | R1 | R2 | R3 | R1 | R2 | R3 | R1 | R2 | R3 |
0 | 6.8 | 5.4 | 5.2 | 13 | 16.8 | 13.2 | 11.6 | 13 | 16.6 |
30 | 4.6 | 5 | 4.4 | 7.8 | 8.6 | 11.2 | 9.6 | 11.6 | 9.6 |
60 | 3.4 | 4.4 | 3.2 | 7.4 | 6.2 | 8.6 | 7.2 | 10.2 | 6.4 |
90 | 2.6 | 1.8 | 1.8 | 6.8 | 5 | 6.2 | 6.6 | 9.4 | 5.2 |
120 | 1.8 | 1.2 | 1.4 | 5 | 3.4 | 4.6 | 5.6 | 8.4 | 4.6 |
150 | 1.2 | 1.0 | 1.2 | 3 | 1.2 | 2.8 | 4.2 | 6.4 | 3.8 |
180 | 0.7 | 0.4 | 0.9 | 2.3 | 0.6 | 1.5 | 3.4 | 4.4 | 2.6 |
Tabla n°1. Conteo del alimento (Scenedesmus sp) en un determinado lapso de tiempo (30 min), en los tres tratamiento con Brachionus sp; con sus respectiva repeticiones.
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