MICROBIOLOGIA

MICROBILOGÍA CLÍNICA

Etapa pre-analítica

Etapa analítica

Etapa post-analítica

ÉTAPA PREANALÍTICARECOLECCIÓN DE MUESTRAS MICROBIOLÓGICAS

En términos de la efectividad del laboratorio de microbiología, nada es más importante que las apropiadas indicaciones de recolección, selección, toma y transporte de las muestras clínicas.

LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA

HOSPITAL GENERAL DE SILAO, GTO

MICROBIÓLOGO: JORGE SALAZAR-MARES

RECOLECCIÓN POR EL PERSONAL DE LABORATORIO

ESPÉCIMEN

Garganta (faringeo)

Orina

Heces*

Nasal

Vaginal

Uretral

Heridas

Esputo por expectoración

Hemocultivo periférico*

Vulvar

Recolección por personal médico

ESPÉCIMEN

Abscesos cerrados

Aspirado trans-traqueal

Lavado bronquial

Cepillado bronquial

Orina por catéter

Orina por aspiración suprapúbica

Fístulas

Hemocultivo central y periférico*

Líquidos corporales

Tejidos

Cultivo por punción (búsqueda de anaerobios)

NORMAS BÁSICAS GENERALES

EN TODOS LOS CASOS IMPRESCINDIBLE LA SOLICITUD

Nombre

Edad

Sexo

Servicio

Diagnóstico

Tipo de muestra

Ingesta de antibióticos en los últimos 7días

-Todos los datos son importantes-

ABSCESOS , FÍSTULAS Y HERIDAS.

MATERIAL NECESARIO

Solución fisiológica

Gasas estériles

Medios de transporte “Stuart”-Amies

Porta objetos ( frotis tinción de gram)

Guantes estériles

Hisopos estériles

Jeringas

ABSCESOS , FÍSTULAS Y HERIDAS. 

Limpie la superficie del absceso o herida con solución salina estéril o alcohol etílico al 70%.

Si el absceso es cerrado, preferiblemente aspire con aguja la muestra de la base o de la pared de la lesión

En caso absceso abierto , fístula o herida, introduzca un hisopo profundamente dentro de la lesión, sin tocar el área superficial ya que puede introducir en la muestra bacterias que están colonizando la superficie y no están envueltas en el proceso infeccioso.

No cultive lesiones secas, a menos que esté presente el exudado.

Colocar la muestra en medio de trasporte y realizar frotis para tinción de gram

No envíe solo pus, ya que ésta no es representativa de la lesión. La base y bordes activos de la lesión son mas apropiados.

CULTIVOS DE SANGRE

HEMOCULTIVO PERIFÉRICO

Material necesario

Frascos de hemocultivo proporcionado por el Laboratorio

Ligadura

Jeringas 5-10 mL

Gasas estériles

Alcohol etílico 70%

Isodine

Campo estéril

Guantes estériles

Cubre bocas

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA

CUMPLIR LAS MAXIMAS PRECAUCIONES DE ASEPSIA

Lavarse las manos

Localizar vena

Colocar ligadura y campo estéril

Realizar antisepsia con alcohol 70% en una zona de piel 10 cm de diámetro alrededor del sitio de punción.

Repetir el procedimiento con isodine. Dejar actuar 1-2 min

Desinfectar el tapón de goma del frasco de hemocultivo con alcohol

Colocar los guantes estéril

Extraer la sangre necesaria sin tocar en ningún momento la zona desinfectada

Inyectar directamente la sangre en el frasco. No es necesario cambiar la aguja

Mover el frasco para que el medio y la sangre se mezclen

Rotular y enviar inmediatamente al laboratorio

Coleccione la muestra de sangre a razón de 2-5 ml para niños y 5-10 ml para adultos en cada frasco. El volumen de sangre a cultivar es el factor más importante en la recuperación del microorganismo. 

CULTIVOS DE SANGRE

HEMOCULTIVO CATÉTER CENTRAL

Procedimiento exclusivo para personal médico y enfermería

Material necesario

Jeringas v/v

Gasas estéril

Guantes estéril

Solución salina estéril

Anticoagulante heparina

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA

Lavarse las manos

Colocar guantes estériles

Cerrar todas las vías

Extraer de 2 a 4 mL de sangre (desechar)

Conectar otra jeringa y extraer muestra necesaria

Colocar la aguja estéril

Desinfectar el tapón de goma del frasco de hemocultivo con alcohol

Inyectar directamente la sangre en el frasco

Mover el frasco para que el medio y la sangre se mezclen

Rotular y enviar inmediatamente al laboratorio

-Bañar la jeringa con heparina y colocar 3mL de sol. Salina-

EXUDADO FARINGEO

Utilizando un abatelenguas, presione la lengua hacia abajo para observar el fondo de la faringe para localizar el área de inflamación y exudado.

Utilizando un hisopo, rote el mismo sobre el área de exudado y faringe posterior.

No toque el resto del área de la cavidad oral o los dientes.

Colocar el primer hisopo en medio de transporte y segundo para tinción de gram

Envíe al laboratorio.

EXUDADO FARINGEO

EXUDADO NASAL

Inserte un hisopo humedecido con solución salina estéril +/- 2cm dentro de la fosa nasal.

Rote el hisopo contra la mucosa nasal, dejar el hisopo 30 seg y retirar rotando

Colocar el hisopo en medio de transporte y realizar frotis para tinción de gram.

El cultivo nasal no predice el agente etiológico de infecciones en oído medio o el tracto respiratorio inferior.

MUESTRA DEL TRACTO URINARIO

OBTENCIÓN DE MUESTRA PARA UROCULTIVO EN EL PACIENTE SIN SONDA

MATERIAL

Frasco estéril

Agua y jabón

Gasas estériles

OBTENCIÓN DE LA MUESTRA

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