PRÁCTICA No 2: DETERMINACIÓN DE PROTEÍNAS POR EL MÉTODO DE LOWRY Y EL MÉTODO DE BRADFORD
Enviado por Paulinithaa • 4 de Octubre de 2015 • Documentos de Investigación • 791 Palabras (4 Páginas) • 1.099 Visitas
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INSTITUTO POLITECNICO NACIONAL
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLOGICAS
INGENIERÍA BIOQUÍMICA
LABORATORIO DE MÉTODOS DE ANALISIS
PORFESOR: CAROLINA
GRUPO: 4IM2
NOMBRE DEL ALUMNO: PAOLA MARTÍNEZ ROSSETE
PRÁCTICA No 2: DETERMINACIÓN DE PROTEÍNAS POR EL MÉTODO DE LOWRY Y EL MÉTODO DE BRADFORD
SECCIÓN No 3
OBJETIVOS:
- Elaborar una curva de calibración para la cuantificación de proteínas empleando un método fotométrico.
- Determinar si hay diferencia estadísticamente significativa en la precisión y la exactitud entre los métodos de Bradford y Lowry.
- Conocer el efecto de sustancias no proteínicas en el desarrollo de color
- Analizar las ventajas y desventajas del método de Lowry y Bradford, con respecto a otros métodos para la cuantificación de proteínas.
FUNDAMENTO:
El método de Lowry es uno de los métodos más empleados para determinar la cantidad de proteínas en una muestra, que está basado en la asociación de dos reacciones complementarias:
1. Reacción del Biuret: característica de grupos aminopeptídicos, con los que el Cu (II) en medio alcalino forma enlaces de coordinación, originando complejos de color violeta.
2. Reactivo de Folin-Ciocalteu: característica de grupos -OH reductores que, junto con los complejos cuproproteicos de la reacción del Biuret, reducen el reactivo de Folin, el cual vira a color azul oscuro.
El espectro de absorción del reactivo de Folin reducido presenta un máximo de absorción a 640nm y su intensidad es proporcional a la de proteínas que existe en la muestra
El método de Bradford se basa en utilizar un colorante hidrofóbico (comassie G-250) cuyas disoluciones acuosas en presencia de ácido fosfórico tienen un color pardo que al entrar en contacto con la parte hidrofóbica del interior de una proteína se fija.
Las proteínas se unen a la forma azul para formar un complejo proteína-colorante con un coeficiente de extinción molar mayor que el colorante libre; a mayor cantidad de proteínas mayor es el color desarrollado y por lo tanto mayor será su absorbancia, es por ello que se considera un cromoforo exógeno
Éste método es sensible a los restos de contaminantes tales como detergentes y líquidos orgánicos, para poder medir la absorbancia se construye una curva de calibración empleando una proteína patrón que generalmente es albumina que se lee a una longitud de onda de 595 nm
DATOS EXPERIMENTALES:
TABLA CURVA DE CALIBRACIÓN DE ALBÚMINA O HEMOGLOBINA, MÉTODO DE LOWRY
Tubo No 1 | Cantidad de proteína (µg) | A590 | |
Serie 1 | Serie 2 | ||
1 | 25 µg | 0.063 | 0 |
2 | 50 µg | 0.069 | 0.132 |
3 | 75 µg | 0.049 | 0.001 |
4 | 100 µg | 0.131 | 0.257 |
5 | 125 µg | 0.168 | 0.199 |
[pic 3]
CUESTIONARIO:
1.- Calcule lo valores de la pendiente, ordenada al origen y el coeficiente de correlación y diga cómo se interpretan para la curva de calibración
Valores | Interpretación |
a= 0.02615 | Es donde corta el eje de las coordenadas |
b= 1.088 x10-3 | Muestra que tan sensible es nuestra determinación |
r=0.9818 | Muestra que tanta relación hay entre nuestras variables, en este caso entre la absorbancia y la concentración |
2.- ¿Cumple su curva con la Ley de Bouger y Beer? ¿Entre que límites de cantidad de proteína?
- Si la cumple ya que se muestra una tendencia lineal al momento de realizar nuestra curva de calibración, los puntos que se observan muy dispersos entre ellos son por errores determinados, es decir errores del analista.
3.- A partir de la recta ajustada por regresión lineal y la ecuación de la misma, obtenga la expresión matemática para calcular la cantidad de proteína
Ecuación de la recta:
[pic 4]
Despejamos a x para así saber la cantidad de proteína que hay en cada uno de los tubos
[pic 5]
ÁNALISIS ESTADÍSTICO
Tubo No | A590 | Cantidad de Proteína (µg) |
1 | 0.138 | 102.80 |
2 | 0.165 | 127.6194 |
3 | 0.099 | 66.957 |
4 | 0.09 | 58.6856 |
5 | 0.092 | 60.5238 |
6 | 0.159 | 122.1047 |
7 | 0.137 | 101.884 |
8 | 0.112 | 78.90625 |
9 | 0.125 | 90.854 |
10 | 0.109 | 76.1488 |
[pic 6] | S | S2 | % C.V. | µ |
88.6483 | 24.56 | 603.1936 | 27.70 | (71.0803, 106.2161) |
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