Tinciones cuadro

Tinción

Tipo

Características

Uso

Ejemplo

Hematoxilina

Básica / Acidofílica

Tiñe núcleos, ácidos nucleicos y estructuras basofílicas (mitocondrias y ribosomas) en azul.

Tinción histológica general

[pic 1]

Eosina

Ácida / Basofílica

Tiñe proteínas y estructuras con afinidad por los ácidos en diferentes tonos de rojo

Tinción histológica general

[pic 2]

Tinción hematoxilina-eosina

Bicomponente
Anfifílica

• Los núcleos aparecen en azul (hematoxilina).
• Los ácidos nucleicos asociados a proteína (ej. ribosomas) en violeta
• Fibra muscular en rojo
• Tejido conectivo en rosado

Tinción histológica general

[pic 3]

Tinción hemalumbre-eosina

Similar a la tinción H&E con colores más marcados y definidos

Tinción histológica general

[pic 4]

Tinción HOPS

Policromática

• Los núcleos aparecen en azul (hematoxilina).
• La elastina aparece en negro (orceína).
• Fibra muscular en rojo (filoxina)
• Tejido conectivo (colágeno) en amarillo (safranina)

[pic 5]

Tinción HPS

• Los núcleos aparecen en azul (hematoxilina).
• Fibra muscular en rojo (filoxina)
• Tejido conectivo (colágeno) en amarillo (safranina)

[pic 6]

Tinción de Papanicolau

Permite ver la cromatina con mucha claridad.

• Los núcleos aparecen de color entre azul y negro.
• Células con alto contenido de queratina en amarillo
• Glucógeno en amarillo
• Células superficiales de naranja a rosado
• Células intermedias y parabasales entre turquesa y azul
• Las células metaplásicas muestran coloraciones mezcladas (por ejemplo, verde y rosa).

Se utiliza para diferenciar células en muestras de secreciones biológicas (esputo, LCR, orina, etc.) y en raspados y biopsias. Permite distinguir con relativa facilidad células con transformaciones neoplásicas, levaduras y bacterias.

[pic 7]

[pic 8]

[pic 9]

Tinción de Romanowsky

Pancromática
de
Romanowsky

Extendidos sanguíneos

[pic 10]

Tinción de Wright

[pic 11]

Tinción de Giemsa

[pic 12]

Tinción de Jenner

[pic 13]

Tinción de Leishman

[pic 14]

Tinción de Field

[pic 15]

Tinción de May Grünwald

[pic 16]

Tinción de May Grünwald-Giemsa

[pic 17]

Tinción con azul de metileno

Supravital

metacromática

Tiñe de azul oscuro restos de ácidos nucleicos, y los proteoglicanos ácidos en varios tonos de violeta.

Diagnóstico de anemias regenerativas

Demostración de estructuras metacromáticas

[pic 18]

Tinción con azul de prusia

Tiñe los depósitos de hemosiderina y hierro de color azul-celeste

Diagnóstico de hemopoyesis ineficaz, y hemocromatosis

[pic 19]

Tinción tricrómica de Masson

Tricrómica

• Los núcleos aparecen en marrón o negro.
• Keratina y músculo en rojo
• Los citoplasmas aparecen en tonos de rosa.
• El colágeno y el hueso, en azul o verde.

[pic 20]

Tinción tricrómica de Lillie

Símil tricrómica de Masson

[pic 21]

Tinción tricrómica AZAN de Heidenhan

Símil tricrómica de Masson. Los citoplasmas aparecen en tonos de rojo más profundos y el conectivo en tonos más intensos de azul.

[pic 22]

Tinción tricrómica de Mallory

Símil tricrómica de Masson

[pic 23]

Tinción de Van Gieson

• Los núcleos celulares aparecen en colores de marrón a negro.
• Colágeno (tejido conectivo fibroso): color rosa o rojo.
• Músculo y citoplasma: color amarillo.

[pic 24]

Tinción de Movat

• Negro = núcleos, fibras elásticas
• Amarillo = colágeno, fibras reticulares
• Azul = sustancia basal, mucina
• Rojo brillante = fibrina
• Rojo = músculo

[pic 25]

Tinción tricrómica de Gömöri

Tricrómica
Argéntica

Tinción de Warthin-Starry

Argéntica

[pic 26]

Tinción de Von Kossa

Tiñe de tonos de marrón y negro los depósitos de fosfato inorgánico en hueso.

Tinción de Golgi

[pic 27]

Tinción de Bielchowsky

[pic 28]

Tinción de Jones

[pic 29]

Tinciones para microbiología

Tinción de Gram

[pic 30]

Tinción de Ziehl-Neelsen

[pic 31]

Tinción de Schaeffer-Fulton

Tiñe endosporas de verde y bacterias en rojo

Sirve para diferenciar endosporas y bacterias.

[pic 32]

Tinción de Conklin

Tiñe endosporas de verde, similar a la tinción de Schaeffer-Fulton.

Tinción de Grocott

Detección de microorganismos, en especial fúngicos.

[pic 33]

Tinción de Dieterle

Búsqueda de microorganismos (por ejemplo, Treponema pallidum)

[pic 34]

Tinción negativa

Tiñe el exterior, pero no el interior de células y estructuras.

Es muy utilizada en microscopía electrónica. En microscopía óptica, para identificar microorganismos encapsulados.

[pic 35]

Tinción con mucicarmina

Tiñe las paredes celulares de polisacáridos de un intenso color rojo.

Sirve para diferenciar bacterias con pared de polisacáridos de otras que no (por ejemplo, los Cryptococcus son mucicarmina +).

[pic 36]

Tinciones para organelos

Tinción metacromática

Produce colores púrpuras y violetas en presencia de mucopolisacáridos ácidos sulfatados.

[pic 37]

Tinciones para fibras

Tinción de Weigert

Tiñe fibras elásticas en tonos de azul y violeta.

[pic 38]

Tinción con orceína

Tiñe fibras elásticas en tonos de marrón y negro.

[pic 39]

Tinciones para carbohidratos

Tinción PAS

Tiñe carbohidratos y proteínas glicosiladas de color rojo magenta.

[pic 40]

Tinción con Lugol

Tiñe el almidón de azul, el glucógeno de amarillo y el resto en tonos de ocre.

[pic 41]

Tinción con carmín

Tiñe el glicógeno de intenso color rojo.

[pic 42]

Tinciones para proteínas

Tinción argéntica

En función del fijado, tiñe proteínas y ácidos nucleicos en tonos de negro y marrón.

[pic 43]

Tinción con Rojo Congo

Tiñe el amiloide de un intenso color rojo.

Se utiliza con hematoxilina/eosina en patología cuando se busca amiloide.

[pic 44]

Tinción con Alcian Blue

Tiñe mucopolisacáridos ácidos de color azul.

[pic 45]

Tinción con Coomassie Brilliant Blue

Tiñe inespecíficamente proteínas de color azul.

[pic 46]

Tinciones para ácidos nucleicos

Tinción de Feulgen

Tiñe el ADN y los cromosomas de color rojo-violeta.

[pic 47]

Naranja de acridina

Tiñe ADN y cromosomas de color verde fluorescente, ARN y ribosomas en color rojo fluorescente.

[pic 48]

DAPI

Tiñe ADN de color azul-celeste fluorescente.

[pic 49]

Bromuro de etidio

[pic 50]

Tinciones para lípidos

Tinción con Luxol Fast Blue

Tiñe la mielina de color azul-celeste.

[pic 51]

Técnica de la Hematina ácida de Baker

Tiñe fosfolípidos y nucleoproteínas de color azul negro.

Tinción con Oil Red O

Sudán
lipofílica

Tiñe lípidos neutros de color rojo intenso

[pic 52]

Tinción con Sudan Black B

Tiñe gotas de lípidos neutros de color negro azulado.

[pic 53]

Tinción con Sudan II

Tinción con Sudan III

Tiñe lípidos neutros de color rojo.

Tinción con Sudan IV