Drenaje Natural

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS NUM.253 “MIGUEL HIDALGO Y COSTILLA”

MÓDULO: Auxilia en los procesos básicos del laboratorio clínico

SUBMÓDULO: Prepara soluciones básicas para operaciones básicas del laboratorio clínico

DOCENTE: Q.B.A. Liu León Francisco Javier

GRUPO: 2AMLc EQUIPO: 5

INTEGRANTES:

Loeza Castro Ivian Andrea ( 100% )

Martínez López Jennifer Anahí ( 100% )

Martínez Salinas Ana Paola ( 100% )

López Torres Paloma Monserrat ( 100% )

Maldonado Martínez Guillermo Antonio ( 100% )

Jiménez García Sergio Iván ( 100% )

-TINCIÓN PARA RETICULOCITOS-

Los reticulocitos son eritrocitos jóvenes no nucleados que todavía contienen residuos de ARN en su citoplasma. al teñirlos con azul de metileno el ARN se precipita como filamentos y gránulos azulosos dentro del glóbulo rojo.

PROCEDIMIENTO:

-Con una pipeta pasteur poner tres gotas de sangre (capilar o venosa) y tres de azul de metileno en un tubo de ensaye y mezclar.

- dejar en reposo a temperatura ambiente de 5 a 15 minutos

- Mezclar nuevamente y colocar una gota de la muestra sobre un portaobjetos y extender, dejar secar al aire

- Contar 1000 eritrocitos con seco fuerte (100x) y anotar el número de reticulocitos contados

CALCULO:

%reticulocitos=[no de reticulocitos contados/ número de eritrocitos contados] x 100

el porcentaje de células en la sangre total que contiene reticulocitos es del 0.5 al 1.5%

*en un individuo anémico la cuenta de reticulocitos parece normal por lo que es necesario hacer una corrección. La cuenta reticulocitaria corregida supera el problema de dilación y es útil para valorar la respuesta de la medula osea en la anemia. La corrección hace ajustes proporcionales a la gravedad de la anemia.

Se calcula a partir de:

cuenta de reticulocitos (%)= Hto del paciente/ Hto normal (0.45)= reticulocitos corregidos

o bien: reticulocitos (%)= Hb (g/dl) del paciente/Hb normal (15 g/dl)= reticulocitos corregidos.

-TINCIÓN DE BAAR-

La tinción de Ziehl-Neelsen (BAAR) es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, usada para la identificación de microorganismos patógenos, como M. tuberculosis o el género Apicomplexa (coccidios intestinales) entre otros. Fue descrita por primera vez por dos médicos alemanes: Franz Ziehl, un bacteriólogo, y Friedrich Neelsen, un patólogo.

Las paredes celulares de ciertas bacterias contienen ácidos grasos (ácidos micólicos) de cadena larga (50 a 90 átomos de carbono) que les confieren la propiedad de resistir la decoloracíón con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se denominan ácido-alcohol resistentes. Las microbacterias como Mycobacterium tuberculosis y M. marinum se caracterizan por sus propiedades de ácido-alcohol resistencia. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento para que el colorante atraviese la pared bacteriana que contiene ceras. Al suspender el calentamiento y enfriar con agua, provoca una nueva solidificación de los ácidos grasos de modo que el colorante ya no puede salir de las bacterias.

PROCEDIMIENTO:

1.-Hacer un frotis de la muestra.

La fijación al calor asegurará de que el frotis quede adherido al portaobjetos. Un frotis muy delgado puede darle resultados falsamente negativos y un frotis muy grueso puede desprenderse del portaobjetos durante la tinción.

2.-Utilizando pinzas, coloque los portaobjetos en una gradilla de tinción con los extendidos hacia arriba. Nunca tiña más de 12 portaobjetos a la vez.

3.-Dejar el frotis sobre el puente de tinción.

4.-Aplicar fucsina-fenicada.

5.-Deje que el colorante permanezca sobre los portaobjetos durante 5 minutos. Mantenga el calor durante este período.

6.-Calentar

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