Acidos Grasos En La Acuicultura
algasp10 de Diciembre de 2013
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Advanced DHA, EPA y materiales ArA enriquecimiento
para la acuicultura marina con heterótrofo unicelular
1. Introducción
En la actualidad, la harina de pescado y aceite de pescado son los principales ingredientes de peces marinos y camarones
alimenta. Juntos, proporcionan un buen equilibrio de proteínas de alta calidad (aminoácido
composición) y lípidos (que contienen cadena larga n _ 3 los ácidos grasos poliinsaturados) en un
energía altamente digerible forma densa. Los estudios han demostrado que las dietas que contienen a base de pescado
ingredientes por lo general han obtenido mejores resultados en términos de crecimiento y la eficiencia alimenticia de
Las dietas que contienen otras fuentes de origen vegetal (Moyano et al, 1992;. Webster et al, 1992.;
Gallagher, 1994; Kikuchi, 1999). Sin embargo, como resultado de una disminución del suministro de pesca
subproductos y la preocupación por la calidad, la industria acuícola está activamente
investigar alternativas de fuentes de nutrientes (Naylor et al., 2000).
Considerable interés e investigación se han dedicado a desarrollar unicelular
organismos tales como levaduras, mohos, bacterias, microalgas y hongos como aditivos para la acuicultura
alimenta. Varios estudios han demostrado que la sustitución parcial de la base de pescado
ingredientes con levadura y bacterias no comprometer la supervivencia de pescado, el crecimiento, o la enfermedad
resistencia (Anon, 1977; Dabrowski, 1982; Dabrowski et al, 1985;. Murray y Marchant,
1986). Una gran ventaja en el uso de organismos unicelulares es que existe la tecnología
para producir cantidades industriales bajo condiciones controladas y ambientalmente seguro.
Además, la composición de muchos microorganismos pueden ser manipulados para producir un mayor
los niveles de proteínas y lípidos, por enriquecimiento con específicos aminoácidos esenciales o ácidos grasos
(Kangas et al, 1982;. Tan y Johns, 1991; Sánchez et al, 1995;. Día y Tsavalos, 1996).
De hecho, los extractos de aceite de las algas que contienen largas cadenas de ácidos grasos poliinsaturados (AGPICL)
están ya en uso como suplementos nutricionales en los preparados para lactantes humanos (revisado en
Cohen et al., 1995). Aunque un número de estudios han informado de la inclusión de
microalgas fotosintética en alimentos de acuicultura (Day et al, 1990;. Zhou et al, 1991.;
Laing y Millican, 1992; Día y Tsavalos, 1996; Langden y Onal, 1999), esta
enfoque no ha encontrado aplicación comercial para reemplazar a base de pescado ingredientes, principalmente
debido a sus altos costos de producción y la ineficiencia cultura (Borowitzka, 1992; Chaumont,
1993; Wilkinson, 1998). Una alternativa económica es el uso de las algas que crecen en heterotróficas
fermentadores convencionales (Day et al, 1991;. Gladue y Maxey, 1994). Este tipo de algas
el cultivo se lleva a cabo bajo condiciones controladas usando una fuente de carbono orgánico (es decir
glucosa) para proporcionar tanto el carbono y energía para el crecimiento.
El enfoque de crecimiento heterótrofo tiene varias ventajas sobre fotótrofas
cultura. La principal ventaja es que la cultura heterotrófica no necesita la inversión en
iluminación y la electricidad necesaria en el crecimiento de algas fototróficos. La producción de
biomasa heterótrofa de algas, que se lleva a cabo de acuerdo con estandarizado existente
tecnología, puede costar menos de 5 dólares EE.UU. kg _ 1 (Gladue y Maxey, 1994), mientras fototróficos
la producción de algas puede ser dos órdenes de magnitud mayor (Benemann, 1992).
Además, la cultura heterótrofos produce una mayor densidad de células (> 75 gl _ 1 DW, Correr
et al., 1994) en recipientes de cultivo fácilmente disponibles a gran escala (hasta 500 _ 10 3 l), que
reduce notablemente el esfuerzo de recolección.
En una serie de estudios, se evaluó la utilización de microalgas heterotróficamente crecido y su
aceite extraído como fuente de nutrientes y ácidos grasos esenciales para rotíferos y Artemia, que
se usaron entonces en las larvas de peces, así como en las dietas formuladas reproductores. Estas fuentes pueden ser
particularmente rica en el ácido docosahexaenoico (DHA) y ácido araquidónico (ARA), que son necesaria para el crecimiento y la supervivencia de las larvas, así como contribuir a la calidad del esperma y el huevo
cuando se incluyen en las dietas de reproductores.
2. Materiales y métodos
2,1. Fuentes de Algas
Heterotrophicaly cultivan algas materiales a base fueron las siguientes: secado por pulverización
preparaciones de células enteras (WC-Cr), células desgrasados (DC-Cr), rico en DHA triglicéridos
(TAG-Cr) y fosfolípidos (PL-Cr) extracciones de Crypthecodinium sp., Células enteras (WC Cl)
de Chlorella sp., y un extracto de fosfolípidos ara-rico (PL-Mo) del hongo,
Mortierella alpina. Todas las comidas algas y sus materiales residuales se originó a partir de un industrial
aceite de fermentación extracción proceso realizado por Martek Bioscience (Columbia, MD, EE.UU.).
Antes de la extracción de aceite, Crypthecodinium sp. células se rompieron por fuerzas mecánicas de cizallamiento
y degradación de la enzima, la biomasa resultante luego secada por pulverización y el aceite crudo extraído
con hexano utilizando el protocolo estándar industrial de extracción de aceite. Residuales PL-Cr materiales fueron
productos de la refinación y aguas abajo los procesos de acondicionamiento para el invierno el extracto crudo aceite de algas.
El lípido y la composición de ácidos grasos de estos materiales se presentan en la Tabla 1. Además,
dos enriquecimiento de mezclas que contienen por pulverización driedWC-Cl y PL-Cr (50:50), o WC Cr-Mo y PL
87,5:12,5) se prepararon también. Una mezcla de 4% de ácido algínico, 1% de ácido ascórbico, 1% de un tocoferol
y 2% basado en el silicio agente anti-espumante (todos de Sigma, St. Louis, MO) fueron
añadido (w / w de base) para cada uno de los materiales de algas secadas por pulverización. El efecto de estas algas y
fuente de hongos sobre el estado nutricional de los alimentos vivos y larvas de peces fueron comparados con
el producto comercial Algamac-2000, una preparación secada por pulverización de células enteras de heterotróficamente
crecido Schizochytrium sp. (Bio-Marine, Hawthorne, CA, EE.UU.) o DHA Selco, un
de aceite de pescado a base de emulsión (INVE Aquaculture, Dendermonde, Bélgica).
2,2. Los reproductores dieta
Los efectos de las algas cultivadas heterotróficamente basados en fuentes fueron probados en la dieta de los
lubina estriada, Morone saxatilis, los reproductores en el Centro de Acuicultura del Centro de Investigación
de Biotecnología Marina (COMB, Baltimore, MD, EE.UU.). Tres dietas, idénticos en proteínas,
contenido de lípidos y energía y que contienen 8-11% de DC-Cr, fueron preparados. Se diferenciaban, sin embargo, en sus niveles de PL-Cr y Mo. PL-dietas-1 y -2 se suplementaron con 2%
y 4% de PL-Cr, respectivamente, mientras que la dieta-3 fue suplementado con 4% PL-Cr y Mo 5% PL.
A comercialmente disponible dieta de engorda para el bajo rayado (Moore-Clark, Bellingham,
WA, EE.UU.) se utilizó como la dieta de control (dieta-4). Formulación de la dieta, el análisis proximal y
ácido graso seleccionado y las composiciones de aminoácidos se presentan en las Tablas 2 y 3.
Después de que el pescado biopsia se realizó por sexo, cada dieta se alimentó a un grupo de 15 peces (5 machos
y 10 hembras, 3-6 kg cada uno) en un 4-m 3 tanque circular. Cada tanque se suministra con 4-6
psu agua de mar sintética (15 j C) recirculado a través de un sistema de tambor de filtro y filtro de bio-y
expuestas al fotoperiodo natural. Los peces fueron alimentados con una ración de 15 g kg _ 1 _ 1 BW días, a partir del 1
meses antes del desove y continuó a lo largo del año hasta la próxima temporada de desove.
Los pesos femeninos y masculinos en cada tratamiento dietético en el comienzo de la alimentación
senderos y al comienzo de la temporada de desove segundo se dan en la Tabla 4.
Todos los peces fueron biopsia de nuevo al comienzo de la temporada de desove segundo. Uno
hembra madura de cada tratamiento llegando a una etapa final de desarrollo gonadal (ovocito
diámetro> 800 A m) se implantó con implantes de liberación controlada que contienen un GnRH
analógica (50 kg A 1 g _ BW, Mylonas et al., 1998). Dos hombres, de cada tratamiento, fueron también
inducida mediante la implantación de implantes similares con GnRH (20 A kg _ 1 g BW). El pescado inducida
se colocaron en un tanque de desove separado, en condiciones similares de agua como el depósito original,
y luego la temperatura del agua aumentó durante la noche a 17 j C. Fish comenzó desove
ca. 48 h de inducción de desove siguiente. Un procedimiento similar se repitió durante la segunda
temporada de desove hasta tres hembras diferentes de cada tratamiento dietético había desovar
con éxito. Cada tanque de desove
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