Reporte de Practica de Laboratorio. Practica 9. “Coeficiente de reparto.”

[pic 1]                   Instituto Tecnológico de Mexicali.

Carrera:

Ingeniería Química.

Materia:

Laboratorio Integral 2.

Profesor:

 Dra. Michelle Arredondo

Trabajo:

Reporte de Practica de Laboratorio.

Practica 9.

“Coeficiente de reparto.”

Mesa No. 3

Samuel Lepe de Alba.

No. Control: 13490868.

Mexicali B.C., 21 de Septiembre de 2016.

Objetivo:

Determinar la constante de reparto de una sustancia (ácido acético) entre dos fases inmiscibles (agua y éter) y conocer la dependencia del valor de la constante de reparto con la concentración inicial del ácido.

Introducción:

Se pueden escribir constantes de equilibrio para muchos tipos de procesos químicos. Los equilibrios pueden representar disociación (ácido/base, solubilidad), formación de productos (complejos), reacciones (redox), una distribución o reparto entre dos fases (agua y disolvente no acuoso: extracción por disolvente; adsorción de un compuesto desde una fase acuosa por una superficie activa, como en cromatografía, etc.).

Fundamento teórico:

La constante de equilibrio Kc para la distribución de la especie A entre las dos fases se denomina constante de distribución y se define como:

[pic 2]

Donde es la actividad del soluto en la fase estacionaria y  es su actividad en la fase móvil. Cuando las concentraciones son bajas o cuando intervienen especies no aniónicas, los coeficientes de actividad se acercan a la unidad. En estas condiciones, se sustituyen las actividades  por la concentración analítica molar del soluto en la fase estacionaria y por  su concentración analítica molar en la fase móvil. Entonces la ecuación se escribe de la siguiente forma:[pic 3][pic 4][pic 5][pic 6]

[pic 7]

Donde  y  son las cantidades de moles de analito en las dos fases y  y  son los volúmenes de las dos fases. En una situación ideal la constante de distribución, a veces llamada razón o coeficiente de reparto o distribución, es constante a lo largo del amplio intervalo de concentraciones de soluto; es decir, es directamente proporcional a [pic 8][pic 9][pic 10][pic 11][pic 12][pic 13]

Reactivos:

• Ácido acético (CH3COOH).
• Hidróxido de sodio (NaOH).
• Agua.
• Éter etílico (C2H5)2

Material y equipo:

• 2 matraces volumétricos de 100 mL.
• 3 embudos de separación.
• 2 probetas de 50 mL.
• 2 pipetas graduadas de 1 y 5 mL.
• Perilla.
• Piceta.
• 2 soportes universal.
• 2 pinzas de dos dedos.
• 1 pinza de 3 dedos.
• 1 bureta 50 mL.
• 3 matraces Erlenmeyer de 125 mL.
• 2 anillos de hierro.

Procedimiento:

1. Preparar 50 mL de disolución acuosa de ácido acético 0.5 M.
2. Se prepararan 3 mezclas.
3. En la primera muestra se añadirán 10 ml de ácido acético 0.5 M.
4. Para la segunda muestra se utilizaran 5 mL de ácido acético 0.5 M y 5 mL de agua destilada, con lo que la concentración final de la muestra será de 0.25M.
5.  En el caso del tercero se añadirán 2.5 mL de ácido acético 0.5 M y 7.5 mL de agua destilada, para este caso se tendrá una concentración de 0.125 M.
6. Agregue 8 mL de éter etílico, en cada caso agitar y dejar reposar hasta que se separen dos fases. Dejar que repose el matraz, al menos 10 minutos.
7. Preparar una solución de hidróxido de sodio 1 M.
8. Se toma 2 alícuotas de 5 mL de la fase acuosa y de la fase orgánica.
9. A las muestras de fases orgánicas y acuosas, se le agregan unas cuantas gotas de fenolftaleína, para empezar a ser tituladas con la solución de hidróxido de sodio.
10. Una vez tituladas las muestras orgánicas y acuosas, se mide el volumen gastado de hidróxido de sodio. Escriba en la tabla los resultados obtenidos:

Cálculos y análisis:

Tabla 1: Valoraciones de fases acuosas y orgánicas.

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