CASO CLINICO BACTERIANO

• CASO CLINICO BACTERIANO

Los procesos digestivos constituyen una de las casuísticas que con mayor frecuencia encontramos en la clínica veterinaria de pequeños animales, aproximadamente 20% de los pacientes que entran a la consulta presentan algún desorden gastrointestinal (Simpson y Else 1991). Dentro de estos se encuentra la enfermedad inflamatoria crónica intestinal (EICI, IBD en inglés, siglas correspondientes a Inflammatory Bowel Disease), la que se define como la presencia de signos gastrointestinales crónicos (más de tres semanas de duración), persistentes o recurrentes, lo que confiere su carácter crónico de curso impredecible, acompañados de evidencia histopatológica de inflamación de la mucosa, cuya etiología es indeterminada. Es un proceso idiopático, no obstante, la hipótesis principal es que puede tratarse de una respuesta agresiva, exagerada o inapropiada del sistema inmune a antígenos bacterianos o alimentarios (Hall y German 2007, Washabau y col 2010, Willard 2010). Esta teoría estaría apoyada por el incremento del número de células plasmáticas secretoras de inmunoglobulinas y la presencia de células T en 356 CRESPO Y COL tejidos inflamados (Washabau y col 2010). Los factores predisponentes serían de origen genético y condicionarían la regulación de la respuesta inmune y la permeabilidad intestinal. Estas predisposiciones genéticas se han visto en varias razas caninas como el Pastor Alemán, Basenji, Shar Pei y Soft-coated Wheaten Terrier (Washabau y col 2010). Suele presentarse en animales de edad media o avanzada. No responden a las terapias dietéticas, antiparasitarias y antibióticas, y sí hay respuesta clínica al uso de agentes antiinflamatorios o inmunosupresores. Los signos clínicos, como vómitos, diarrea del intestino delgado, diarrea del intestino grueso, pérdida de peso o alteraciones en el apetito, se deben a estas alteraciones inflamatorias e infiltrados celulares de la mucosa que dan lugar a una disfunción de los enterocitos, y por tanto a una dismotilidad intestinal (Washabau y col 2010). Es importante mencionar que por disfunción del esfínter gastroduodenal (píloro), debido al proceso inflamatorio, puede extenderse el proceso y provocar gastritis, siendo la manifestación clínica el vómito crónico, acompañado o no de diarrea (Hall y German 2007).

SINTOMAS

Los síntomas por los cuales   se decidio realizar este este estudio a este perro, fueron, en primer lugar, la presencia de diarrea, acompañada o seguida en ocasiones de otros síntomas como vómitos, y con las terapias instauradas en un primer momento, tanto dietéticas, como antibióticas o antiparasitarias, no se consiguió resolver el cuadro, o en algunos casos empeoraba y empezaban a presentar pérdida de peso.

PRUEBAS DIAGNOSTICAS

• CULTIVOS

Para el análisis bacteriológico se hizo un cultivo de las muestras fecales en medios artificiales, como Agar EMB y Agar Salmonella Shigella.

1. Se toma una muestra de heces del paciente con los sintomas y se lleva al laboratorio.
2. Se toma un poco con un asa y se lleva a un tubo con agua peptonada, hasta que se ponga un poco tubio.
3. Tomar la caja de petri con el agar respectivo.
4. Prender el mechero.
5. Destapar la caja de petri cerca al mechero.
6. Con un hisopo tomar una muestra de la mezcla.
7. Sembrar en el agar respectivo y dejar incubar por 24 horas a 37º.

• TINCION DE GRAM

1. Fijar frotis tomado de la muestra.
2. Aplicar el colorante primario – Azul violeta – 1 min.
3. Lavar.
4. Agregar lugol por un minnuto para que actue como mordiente.
5. Lavar y sacudir.
6. Agregar alcohol cetona por 30sg.
7. Lavar y sacudir.
8. Agregar colorante secundario – fucsina.

• PRUEBAS BIOQUIMICAS

1. Encender el mechero.
2. Flamear un asa redonda hasta el rojo vivo
3. Tomar una muestra con el asa y sumergir en un tubo de ensayo con agua peptonada, agitar un poco para conseguir turbidez.
4. Abrir la tapa del panel sobre el accerso de inoculacion tirando de la pestaña
5. Transferir suavemente el contenido del tubo a la esquina superior derecha del panel.
6. Sellar el acceso del panel.
7. Despues de añadir la suspensión de pureba, incline el panel hacia el lado contrario a los pocillos
8. Mientras se inclina. Debe mecerse suavemente el panel de lado a lado para distribuirel inoculo.
9. Inclinar lentamete el panel hacia adelante, hacia los posillos de reaccion hasta que el inoculo fluyaben los posillos de reaccion.
10. Devolver el panel a su posicion.
11. Inocular los paneles a 37º por 4 horas .
12. Despues de las 4 horas retirar la tapa que cubre los pocillos.
13. Añadir 2 gotas de reactivo RapID ONE a los pocillos del 15 (PRP) al 17 (PYR)
14. Leer y puntuar los pocillos del 1 (URE) al 18 (ADON) de izquierda a derecha, usando la guia de interpretacion.
15. Registrar las puntuaciones de las pruebas en los recuadros
16. Añadir 2 gotas del reactivo RapID Spot indole al pocillo 18 (ADON/IND).
17. Dejar actuar de 10 sg a 2 min.
18. Leer y puntuar el pocillo del pureba 18 (IND). Regustrar la puntuacion.
19. Consultar el microcodigo obtenido en el formulario de resultados ERIC para la identidicacion.

• ANTIBIOBRAMA

1. Tener listo un agar Mueller Hinton.
2. Prender el mechero.
3. Abrir la caja de petri donde se encuentra el cultivo.
4. Disolver en un tubo de ensayo con agua peptonada hasta conseguir turbidez.
5. Tomar hisopo esteril, empaparlo con la mezcla y realizar una siembra extensiva en el agar Mueller Hinton.
6. Flamear unas pinzas metalicas y dejar enfriar.
7. Tomar los discos de antibiotico uno por uno y ponerlos sobre el cultivo haciendo un poco de presion

Los cinco discos fuero:

1. Tetraciclina
2. Penicilina
3. Trimetropin
4. Cephalotin
5. Gentamicina

RESULTADOS Y ANALISIS

• AGAR EMB: Da un color negro azulado con brillo metalico verde y por esto sabemos que son microorganismos fermentadores de lactosa.

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• TINCION DE GRAM: Bacilos gram negativo.

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• PRUEBAS BIOQUIMICAS: En la pruebas bioquimicas dio positiva para E.Coli.

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• HONGOS

Los hogos son un grupo de eucariotas que difieren mucho por sus características estructurales y sus modos de reproducción. Tienen muy poco en común, excepto la nutrición heterótrofa obligada por su ausencia de clorofila.

Sus células están incluidas en paredes celulares por lo menos en alguna de ciclo vital y producen algún tipo de espora, generalmente en gran número.

Los hongos filamentosos están ampliamente distribuidos en la naturaleza y se ven frecuentemente sobre pan viejo, queso o frutas. Cada filamento crece fundamentalmente en el extremo por un mecanismo de extensión celular.

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