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SEPARACION DE PROTEINAS POR ELECTROFORESIS EN GEL DE POLIACRILAMIDA


Enviado por   •  30 de Abril de 2016  •  Informe  •  2.282 Palabras (10 Páginas)  •  380 Visitas

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SEPARACION DE PROTEINAS POR ELECTROFORESIS EN GEL DE POLIACRILAMIDA

OBJETIVOS

  • Efectuar la separación de proteínas de varias muestras mediante la técnica de electroforesis en gel de poliacrilamida.
  • Determinar cuál es el tamaño óptimo de poro de gel, para la mejor separación de cada una de las muestras.

FUNDAMENTO:

Cuando una mezcla de moléculas ionizadas y con una carga eléctrica neta son colocadas en una campo eléctrico, éstas experimentarán una fuerza de atracción hacia el polo que posea carga opuesta:

[pic 5]

Así, si se deja transcurrir un cierto tiempo las moléculas cargadas positivamente se desplazarán hacia el cátodo (el polo negativo) y aquellas cargadas positivamente se desplazarán hacia el ánodo (el polo positivo).

El movimiento de las moléculas está gobernado también por dos fuerzas adicionales; por un lado, la fricción con el solvente dificultará este movimiento (es decir, al moverse los solutos chocarán con las moléculas de solvente que están en su camino), lo que genera una fuerza que se opone al movimiento; por otro lado, las moléculas tienen a moverse en forma aleatória (movimiento browniano) debido a que poseen energía cinética propia. Esto se denomina difusión y sigue la llamada ley de Fick. La energía cinética de las moléculas aumenta con la temperatura, por ello a mayor temperatura mayor difusión.

La suma de todas estas fuerzas provoca que las moléculas no migren de una manera homogénea, de tal manera que la moléculas son colocadas en un cierto lugar de la solución, los iones comenzarán a moverse formando un frente cuya anchura aumentará con el tiempo.

Para reducir la anchura de este frente podemos reducir el movimiento de las moléculas empleando un medio que oponga más resistencia a dicho movimiento. Una forma común de hacer esto es formar un gel. El gel consiste de un polímero soluble de muy alto peso molecular que atrapa moléculas de agua y forma un tamiz molécular que dificulta el movimiento de los solutos.

Consecuentemente, la migración electroforética de las moléculas será más lenta, pero el ensanchamiento del frente se verá reducido también. Si ahora aumentamos la intensidad del campo eléctrico, podemos acelerar la migración molécular, pero no por ello variará la difusión y nuestro frente migrará de un modo cada vez más compacto. Así, podemos mejorar la definición del frente aumentando la diferencia de potencial entre los polos y esto estará limitado tan sólo la capacidad de la solución para disipar el calor generado por el paso de la corriente eléctrica. Esto último, debido a que si el calor se acumula se puede hacer hervir  a la solución, e incluso descomponer el gel y/o los solutos.

La presencia del gel tiene una consecuencia adicional, ya que aquellas moléculas de mayor tamaño hallarán mayor resistencia al avanzar a través de los poros del gel que aquellas moléculas pequeñas. Por lo tanto, la fricción que se observa durante el movimiento electroforético en un gel depende de la masa y la forma de la molécula, en adición a su carga eléctrica.

Aunque el solvente puede, por si solo, producir una fricción diferente sobre diversas moléculas, su efecto es muy poco apreciable cuando no existe el entramado del gel.

RESULTADOS

[pic 6]

Imagen 1. Electroferogramas a diferentes %T

Tabla 1. Características de los electroferogramas a diferentes %T.

Característica

% T

5.5

7.5

10

12.5

Longitud del gel antes de teñir, (cm) (l)

7.5

7.5

7.6

7

Longitud del gel después de teñir, (cm) (l´)

8.3

8

8.4

7.7

Distancia recorrida por el colorante, (cm), (f)

5.7

5.7

6.5

5.5

No. De bandas

Suero

3

12

9

12

Yogurt

4

14

9

9

Clara

7

13

12

10

Tabla 2. Movilidad electroforética relativa promedio.

% T

Muestra

Valores de m de la proteína seleccionada (cm)

Valor promedio de m (cm)

Movilidad electroforética relativa M

Log (M*100)

5.5

Suero

6.3

6.4

6.2

-

6.3

0.99

1.99

Yogurt

4.7

4.6

4.6

-

4.63

0.73

1.86

Clara

3

2.9

2.92

-

2.93

0.46

1.66

7.5

Suero

5.1

5.2

5.3

5.3

5.2

0.85

1.92

Yogurt

4.1

4.1

4.2

-

4.1

0.67

1.82

Clara

2.7

2.7

2.7

-

2.7

0.44

1.64

10

Suero

5.2

5.3

5.3

5.1

5.22

0.90

1.95

Yogurt

4.6

4.6

4.5

-

4.56

0.78

1.89

Clara

3.1

3.05

3

-

3.05

0.52

1.71

12.5

Suero

3.4

3.5

3.6

-

3.5

0.57

1.75

Yogurt

3.5

3.7

3.7

3.7

3.65

0.60

1.77

Clara

2.3

2.2

2.3

-

2.26

0.37

1.56

...

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