Análisis Fisicoquímico e Instrumental de Alimentos
Enviado por shatzzyt • 27 de Octubre de 2021 • Apuntes • 1.056 Palabras (5 Páginas) • 59 Visitas
Universidad Autónoma del Estado de Hidalgo[pic 1]
Instituto de Ciencias Básicas e Ingeniería
Institute of Basic Sciences and Engineering
Área Académica de Química
Chemistry Department
Análisis Fisicoquímico e Instrumental de Alimentos
Unidad 1
Preparación de muestra y porción de ensayo
Nombre: González Pérez Gabriel Sebastián Semestre: 5to. Fecha: 13/08/21
Completa la información de la table apoyándote del material proporcionado. Indica cuál sería la preparación adecuada de acuerdo a cada alimento
Estudio | Muestra | Preparación de la muestra bruta | Analito | Preparación de la porción de ensayo |
Análisis proximal de galletas de harina de trigo (riticum vulgare): tapirama (phaseolus lunatus) de pueblo nuevo de paraguaná | Galletas de harina de trigo | Para empezar, se empleó un procedimiento previamente descrito el cual las semillas de tapirama deben ser sometidos a una serie de pasos, se inició con el lavado, posteriormente luego se remoja por 24 horas con agua destilada a 37°C aproximadamente. Al grano germinado se le retira la concha en forma manual para después deshidratarlo en estufa de aire forzado por un periodo de 24 horas a una temperatura de 60°C hasta peso constante. Una vez seco fue sometido a molienda empleando un molino de bolas por un lapso de 10 minutos hasta obtener un polvo fino el cual pasara por un tamiz de 200 y así obtener la harina de tapirama, que posteriormente se incorporó a la formulación. Para así realizar galletas de la proporción trigo:tapirama 50:50 | Minerales | Se pesaron 10 g de muestra de galleta para ser llevados a la mufla digital por un lapso comprendido entre 12 a 18 horas hasta obtener una ceniza de color blanco, se dejó enfriar a temperatura ambiente en el desecador. La preparación de la muestra se realizó pesando un gramo de muestra en un beaker de 50 ml al que se adicionaron 2 ml de HCl a 0,1M |
Phenolic compounds and antioxidant activity of methanolic extracts from leaves and flowers of chilcuague (Heliopsis longipes, Asteraceae) | Hojas y flores de chilcuague | Se seleccionaron al azar plantas silvestres de H. longipes en tres localidades de Sierra Gorda, en el centro de México: Conca y San Juan Buenaventura ubicadas en el municipio de Arroyo Seco del Estado de Querétaro y Beltrán ubicado en el municipio de Xichu del Estado de Guanajuato. Los ejemplares del bono fueron identificados y depositados en la colección Etnobotánica del Herbario de Querétaro. Se separaron cincuenta gramos de hojas frescas y flores de la planta H. longipes de cada localidad. Posteriormente, se seleccionaron al azar algunas hojas y flores de cada localidad y se trituraron en nitrógeno líquido. Luego, las muestras trituradas de hojas y flores se maceraron con metanol en una proporción de 1:10. Las suspensiones se colocaron en un sonicador durante 3 horas y se centrifugaron a 10.000 rpm durante 15 minutos a 4 ° C. Los sobrenadantes resultantes (extractos fenólicos solubles) se denominaron extractos metanólicos de hojas y flores y se almacenaron en viales a 4°C en condiciones de oscuridad hasta su uso. | Contenido Total de polifenoles | Se determino espectrofotométricamente, utilizando ácido gálico como estándar. Brevemente, se mezclaron 140 μL del extracto LME o FME (0.5 mg / mL) con 460 μL de agua destilada y 250 μL del reactivo Folin-Ciocalteu (1 N). Después de 5 min, se agregaron 1250 μL de carbonato de sodio al 20% (p / v). La mezcla se agitó en el vórtice y se incubó durante 2 h en la oscuridad. La absorbancia se midió a 760 nm |
/Contenido de vitamina C en dos variedades de moras durante la etapa de maduración | Moras | El material de estudio lo constituyeron las muestras de moras cultivadas y silvestres obtenidas en la Zona del Valle, Municipio Libertador del Estado Mérida, según tipo de mora y etapa de maduración | Vitamina C | Se tomaron, por separado, 5 muestras de 20 g cada una, las cuales también por separado, fueron maceradas, diluidas con 5 mL de agua destilada y filtradas. De cada filtrado se tomó, por triplicado, una alícuota de 1 mL; simultáneamente se preparó una curva de calibración con un patrón de ácido L-ascórbico cuya concentración fue de 1 mg de ácido ascórbico por mL de reactivo a una concentración de 100 mg p/v. Finalmente, tanto las muestras como la curva, fueron leídas utilizando un equipo Spectronic a 540 nm contra un blanco de reactivo. Para el cálculo del ácido L-ascórbico en las muestras se utilizó la curva de calibración. |
Composición nutricional y de compuestos bioactivos en tortillas de poblaciones nativas de maíz con grano azul/morado | Tortillas | Se utilizaron dos poblaciones de maíz con grano azul/morado de cada una de las siguientes razas: Chalqueño (CHAL), Elotes cónicos (EC) y Bolita (BOL). La nixtamalización se realizó a partir de 100g de grano limpio, con 200 mL de agua destilada y 0.7 g de óxido de calcio. La mezcla se calentó en una parrilla eléctrica hasta ebullición y se mantuvo por 20 min para las muestras de CHAL y EC, en tanto que las muestras de BOL se mantuvieron por 30 min. Estos tiempos se ajustaron de acuerdo con la dureza del grano. Las muestras se reposaron a temperatura ambiente por 12-14 h. El nixtamal se enjuagó con agua corriente para eliminar el exceso de cal y se molió en un molino de piedras. La masa se amasó y porciones de 20 g se moldearon en una tortilladora manual y se cocieron en un comal de 15 s por un lado, 1 min por el lado contrario y 15s por la cara de inicio. Las tortillas, cortadas en trozos pequeños, se colocaron en charolas de aluminio y se deshidrataron en un a 40 °C durante 24h. Después se molieron en un molino tipo ciclónico con malla 0.5 mm | Compuestos fenólicos | Se pesó 1 g de tortilla molida y seca y se agregaron 20 mL de metanol acidificado al 1% con ácido trifluoracético (TFA). La mezcla se sonicó por 15 min a temperatura ambiente y se almacenó a temperatura de refrigeración (4 °C) durante 115 min. Se centrifugó por 15 min a 4 000 rpm y se lfitró en papel Whatman No. 4. El volumen se ajustó a 20 mL con el mismo solvente de extracción. |
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