Practica de medica.

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Benemérita Universidad Autónoma de Puebla [pic 2]

Licenciatura en Biotecnología

Biotecnología Médica

Araceli Ugarte Rojano

Nombre de los integrantes:

Pastor Flores Hernández

Samael Cuevas

Sebastian Valeé Pagaza

Juan Carlos Díaz Becerra

Edson Trejo Méndez

INTRODUCCION

El manejo y uso de animales en un laboratorio ha permitido que gracias a los diferentes modelos en ellos la ciencia se desarrolle de una forma importante, facilitando el conocimiento de la biología  y fisiología y así poder establecer  diagnósticos y tratamientos que mejoraran la calidad de vida del hombre. Así mismo cabe resaltar la importancia de trabajar con ética y sin hacer daño innecesario a los modelos animales, evitándoles un dolor y sufrimiento excesivos.

 La medicina científica nace con la observación y la experimentación en animales. Desde las experiencias de William Harvey, comparando el latido cardiaco en distintas especies, los datos obtenidos mediante experimentos en animales han sido tema permanente de interés, tanto para conocer mejor la naturaleza y facultades propias de los distintos grupos zoológicos, como por la eventual aplicación al bienestar humano.

Existe una gran controversia en cuanto el manejo de animales para experimentación e investigación pero aún es inevitable dejar de recurrir a la experimentación animal, esta tal vez pueda ser  reducida en sus dimensiones, enriquecida por cuidados especiales, pero necesaria al fin.

La experimentación animal está regulada por la  NOM-062-ZOO-1990

Esta norma habla sobre el manejo de animales de laboratorio en los diferentes sectores donde se requiere del uso de estos, el principal objetivo de esta norma es obtener un mejor control en las investigaciones que se llevan a cabo así como reducir en medida lo posible el uso de animales para prácticas.

Esta norma específica las características que deben tener los bioterios privados e institucionales en cuanto a su ubicación, ventilación y áreas de actividades; la adquisición de los animales, el tamaño de las jaulas para las diferentes especies; los ingredientes de los alimentos; las obligaciones de la institución para vigilar el buen funcionamiento, la higiene y el bienestar animal; el tipo de personal con el que debe contar, la preparación y los conocimientos que éste, tanto técnico como académico debe tener. También explica las indicaciones acerca del traslado de animales, características del confinamiento y del tipo de transporte, cuidados durante el mismo. En la norma se encuentran además lineamientos referentes a técnicas experimentales, anestesia, analgesia, administración de fluidos y de otras substancias, la obtención de sangre y los métodos permitidos de eutanasia. Finalmente explica los métodos de bioseguridad y salud ocupacional para el personal.

Con la publicación de la Norma para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio se les proporciona a los investigadores mexicanos una importante ayuda para el buen éxito de su actividad científica

OBJETIVOS

El principal objetivo es el aprendizaje de la manipulación de los diferentes animales que son más comúnmente en el laboratorio y conocer las diferentes vías de administración de sustancias en ellos.

Metodología:

Tipos de inyección.-

• Cobayos:

1. Subcutánea.- Se tomara al roedor, de la parte trasera de la cabeza y se le alzara el pellejo, usando el dedo índice y pulgar y se le inyecta en el surco entre pellejo y pellejo, de manera horizontal al individuo.
2. Intramuscular.- Se tomara al roedor de la pata trasera, con índice y pulgar, este se pondrá en la rodilla del individuo para evitar que flexione, mientras el índice sujeta y estira un poco la pata. Y se asentara un poco la mano en el cuerpo y cuello para evitar el que se mueva o realice movimientos bruscos. La inyección se hará desde el comienzo del musculo, y en sentido del mismo, evitando desgarrar o generar mucha presión en el musculo.
3. Peritoneal.- Se tomara al roedor por la espalda y se sujetara del pellejo, una vez así se girara de cabeza al individuo y lo más inclinado así abajo, para evitar el contacto con los intestinos al inyectar. La inyección tiene que ser perpendicular a la posición del cobayo e intentar inyectar en la parte derecha inferior del vientre del mismo.

• Conejos:

1. Subcutánea.- Se tomara al conejo de la parte trasera del cuello y se alzara el pellejo, y se inyectara en el surco pellejo y pellejo, de manera horizontal al conejo.
2. Intramuscular.- Se sujetara con una mano el pellejo del cuello del conejo con una mano y con la otra tensara la pata trasera y con el pulgar se pondrá detrás de la rodilla para evitar que flexión de la rodilla. Mientras la inyección será de menor a mayor cantidad de musculo y en sentido del mismo, para evitar desgarros.
3. Peritoneal.- Se sujetara del cuello y de las patas del conejo, de manera cruzada las manos, para poder poner lo de cabeza, e intentar ser lo más inclinado posible, también se puede poner el conejo entre las piernas para acomodarlo mejor, sin dejar de sujetarlo firmemente con ambas manos. La inyección se realizara en la parte derecha inferior del vientre del conejo y de manera perpendicular al mismo, para evitar perforación de intestinos.

• Ratas:

1. Subcutánea.- Se tomara de la parte del cuello de la rata y alzando el pellejo se inyectara en el surco que hay entre pellejo y pellejo, de manera horizontal al roedor.
2. Peritoneal.- Se sujeta de la pata de manera que el pulgar evite que flexione la pata trasera y el índice sujete y la mano presionara la cabeza y el cuello para evitar movimientos bruscos de del roedor. La inyección se hará de menor a mayor cantidad de musculo y en sentido del mismo, para evitar el desgarre.
3. Peritoneal.- Se tomara la rata del cuello y se usaran el pulgar, índice y el dedo medio para cruzar y sujetar las delanteras de la rata, evitando sujetar o apretar con el resto de los dejos, posteriormente se voltea inclinando lo más posible. La inyección será de manera perpendicular a la rata y será en la parte inferior derecha del vientre.
4. Vía oral.- Se tomara del cuello y usara el pulgar, índice y el dedo medio para cruzar y sujetar las patas delanteras de la rata, evitando utilizar el resto de los dedos. Se cambia la aguja por un embolo, y el método consisten en poner este de lado en la boca de la rata, después acomodarla y poner verticalmente la jeringa, y no empujar la, para introducir más el embolo, se gira con los dedos la jeringa, y si está bien posicionada esta bajara sin aplicar fuerza.

• Ratón:

1. Subcutánea.- Se tomara la cola con una mano y se pondrá en la jaula, donde se sujetara del pellejo y se inyectara en el surco que se forme, de manera horizontal al ratón.
2. Peritoneal.- Se tomara de la cola con una mano y se pondrá en la jaula donde se sujetara del pellejo del cuello, sin dejar de sostener la cola del ratón, se volteara de manera más inclinada posible y se inyectara en la parte inferior derecha del vientre, de manera perpendicular al ratón.

Oral.- Se tomara de la cola con una mano y se pondrá en la jaula donde se sujetara del pellejo del cuello, sin dejar de sostener la cola del ratón. La aguja será sustituida por un embolo, este tiene que ser mordido por el ratón, después se endereza la jeringa y con cuidado de no empujarla se girar con los dedos la jeringa y esta

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